Nyheter

Vävnadsprovtagning är en av de viktiga procedurerna för att tillverka skivor. Enligt de specifika kraven i undervisning, vetenskaplig forskning och extern inspektion är vävnaden hämtad från människor eller djur, och platsen och metoden för provtagning bestäms. Specifika krav är följande: 1. Färska material för att säkerställa den ursprungliga morfologiska strukturen 2. Storleken på vävnadsblock Den ideala volymen för vävnadsblock är 2,0x2,0x0,3 cm, så att fixativet snabbt och jämnt kan tränga in i vävnaden 3. Pressa inte vävnadsblocket. Vävnadsblockets blad ska vara skarpt. Kläm inte vävnaden för hårt för att undvika deformation av vävnaden och cellerna på grund av strängsprutning. 4. Standardisera provtagningspositionen. Provtagningen ska vara korrekt enligt den anatomiska positionen och standardiseras enligt kraven. 5. Att välja sektionen av vävnadsblock bestämmer riktningen för dess sektion beroende på strukturen för varje vävnad. Longitudinella och tvärgående sektioner är ofta nyckeln till att visa vävnadens morfologiska struktur. 6. Håll materialet rent. Om det finns smuts, slem, etc. I vävnadsblocket kan det rengöras med vatten innan det läggs i fixeringslösningen. 7. Håll vävnadens ursprungliga form. Efter fixering av den färska vävnaden kommer det mesta av vävnaden att krympa, ibland till och med helt deformeras. Platta därför vävnaden för att bibehålla prototypen så mycket som möjligt.

I vårt dagliga liv utsätts vi för alla typer av växter, särskilt fröväxter, inklusive tall, gran, cypress, ginkgo och alla slags blommande och fruktväxter. För att systematiskt studera växtklassificering kan vi använda växtprover. Växtprover kan delas in i följande kategorier enligt syftet med användningen (1) Filogenetiskt prov: Syftet med beredning är att observera och studera livshistorien för en växt, det vill säga tillväxten av en växt i varje steg från fröspiring till tillväxt, utveckling, blomning och frukt. Det används ofta i biologisk undervisning, introduktion, odling och vetenskaplig forskning. (2) Hela prov: Används vanligtvis för att identifiera växter, vetenskapliga namn och kinesiska växtbaserade läkemedel. Detta prov används också för vegetationundersökning i ett område. Undersök till exempel anläggningsresurserna för en skola eller berg. Rötter, stjälkar, blad och andra vegetativa organ av högre växter är en av baserna för att identifiera växter, men de är ofta olika på grund av olika tillväxtmiljöer. Blommorna och frukterna har relativt stabil ärftlighet, som bäst kan återspegla växternas inneboende egenskaper och är en viktig grund för att identifiera och identifiera växter. När du samlar prover, försök att samla prov med kompletta rötter, stjälkar, löv, blommor och frukt. Örter bör också grävas upp under jord. Formen och arrangemanget av sporangia, rhizom, skalor och indumentum är viktiga taxonomiska egenskaper hos ormbunkar, som bör uppmärksammas vid samlingen. Hela exemplet görs ofta till vaxbladprov och primärfärgfördjupningsprov. (3) Anatomiskt exemplar: Syftet med beredning är att observera och studera den interna organisationsstrukturen för ett växtorgan. Dissektera till exempel löklampan för att observera strukturen för basplatta, knopp, skala blad, fibrös rot, etc. Sidamembranet placentation och fröbärande position för gurkor observerades genom tvärgående dissektion; Persikblomman dissekerades i längdriktningen för att observera dess olika delar och morfologi. För att samla in denna typ av exemplar behöver du bara välja ett hälsosamt och representativt organ istället för att samla in hela grenen. Anatomiska prover görs vanligtvis till antiseptiska impregnerade prover. (4) Jämförelseprov: Jämförelseprovet används huvudsakligen för att jämföra likheterna och skillnaderna mellan ett organ med olika växter. För att jämföra frömorfologin hos dikotyledoner och monokotyledoner är det till exempel nödvändigt att samla in mogna frukter av våldtäkt, sojabönor, gurka, tomat, etc., ta bort skalet, torka frön och också samla frukt av vete, ris, ris och majs för jämförelse. Jämförelseprovet kan göras till vaxbladprov eller lufttorkat prov, och frukten blötläggs med primärfärg är bättre.

Korrekt underhåll av mikroskopet kan förlänga mikroskopets livslängd. Idag kommer jag att förklara hur man rengör det optiska glaset. Det finns två typer av rengöring av glasytan: rengöring av atomnivå och processteknologi rengöring. Rengöring av atomnivå krävs för särskilda vetenskapliga tillämpningar eftersom den måste utföras under ultra vakuumförhållanden. Generellt krävs endast den rena ytan i processteknologi för att uppfylla kraven för produktbehandling. Optiskt glas används för linser, prismor, linser etc. av instrument. Vid tillverkning och användning är det lätt att få fet smuts, vatten våt smuts, fingeravtryck etc. som påverkar avbildning och ljusöverföring. För att rengöra det optiska glaset bör olika rengöringsmedel, verktyg och metoder väljas enligt smutsens egenskaper och struktur. Rengör linsen belagd med antireflektionsfilm, såsom kamera, glidprojektor och mikroskoplins, och använd cirka 20% alkohol och 80% eter som rengöringsmedel. När du rengör, använd en mjuk borste eller bomullsboll doppad med en liten mängd rengöringsmedel för att göra en cirkulär rörelse från mitten av linsen utåt. Fördjupa inte sådana linser i rengöringsmedel för rengöring, och torka dem inte hårt när du rengör dem, annars skadas antireflektionsfilmen och linsen skadas. Det finns många metoder för att rengöra glasytan, och en av dem kan väljas eller kombineras enligt den ursprungliga föroreningsgraden för glasytan, den efterföljande glasytbehandlingsprocessen och syftet med slutprodukten. Oljedimma, våtdimma och oljevatten blandad dimma på det optiska glaset kan också rengöras med hjälp av rengöringsmedel, och rengöringsmetoden liknar linsen. Mögel på ytan av optiskt glas är ett vanligt fenomen. När det optiska glaset är mögligt kommer ljuset att spridas på ytan, vilket gör bilden suddig och i allvarliga fall kommer instrumentet att skrotas. Anledningen till mögel av optiskt glas är att det finns mikrobiella sporer på ytan. När temperaturen och fuktigheten är lämpliga och "näringsämnen" behövs kommer den att växa snabbt och bilda mögelfläckar. Det är särskilt viktigt att göra det optiska glaset anti mögel och antifouling. När mögel inträffar bör den rengöras omedelbart. Var uppmärksam på torrhet.

Växtblötningsprovet är att lagra färska växtmaterial i lösningen framställd av kemikalier, så att den ursprungliga färg och form på växter kan observeras. Växtens blötläggningsprov har en god bevarandeffekt och en lång bevarandetid, vilket återställer den ursprungliga ljusa färgen på växter. Det har många fördelar och ger en väsentlig vetenskaplig grund för växtforskning. Hur upprätthåller det blötläggande exemplet den ursprungliga färgen på växter? Anledningen till att växter är gröna är att kloroplaster av växter innehåller klorofyll. Klorofyll är en komplex organisk förening. Det finns en metallmagnesiumatom i mitten av dess molekylstruktur. Anledningen till att klorofyll är grön är att den innehåller kärnstrukturen i magnesiumatom. Om du vill hålla det ursprungliga grönt i växter måste du ersätta magnesiumjoner i klorofyll med kopparjoner. Dess metod är att använda syra för att separera magnesium från klorofyllmolekyler. För närvarande, eftersom klorofyll saknar magnesium, blir växten brun. Byt sedan ut kärnmagnesium i klorofyllmolekyl med koppar. Strukturen för klorofyllmolekyl med kopparatom eftersom kärnan är mycket stabil, är inte lätt att sönderdelas och förstöra och är inte löslig i alkohol eller formalin. Därför kan växtprover som behandlas på detta sätt bevaras gröna under lång tid i bevarandelösningen.

Vaxbladprov, även känt som pressat prov, är den vanligaste typen av växtprov. Det är avgörande att korrekt identifiera växtarter för att göra exemplar som kan upprätthålla de naturliga och sanna morfologiska egenskaperna hos växter. Fördelen med vaxbladprover är att de kan bevaras under lång tid. Samlingen av vaxbladprover med en lång historia i världen kan till och med spåras tillbaka till runt 1500 -talet. Emellertid har vaxbladprov som gjorts med denna traditionella metod bleknat på grund av förstörelsen av klorofyll och antocyaniner i växten. Eftersom vaxbladet använder pressningsprocessen presenterar dessutom slutprodukten ett platt tillstånd som har bleknats i brunt gult och fixerat på bordspapperet, som inte är dominerande ur den estetiska synvinkeln. Undertryckningsprocessen är nyckeln till att kombinera de ursprungliga ekologiska egenskaperna hos växter med konstnärlig skönhet. Den pressande effekten på plats är den bästa efter att ha samlat provet, men den faktiska operationen är tidskrävande och arbetsintensiv, vilket är svårt. Därför kan växten läggas i den självförsegling plastpåsen. För att förhindra extruderingsdeformation är det nödvändigt att blåsa upp bältet, markera motsvarande insamlingsinformation och få tillbaka den för att trycka efter tätning. För växter som är tunna och sårbara för vattenförlust måste de undertryckas på plats för att exakt beskriva växtegenskaper. När du placerar växterna i provmappen, försök att sprida rötter, grenar, löv, blommor och frukt och vända dem delvis för att bättre förstå provegenskaperna.

Användningen av biologiska exemplar är mångfaldig och spelar en viktig roll i vetenskaplig forskning och biologisk undervisning. Dessutom är de också av stort värde i ritning, utställning, visning, etc. För vetenskaplig forskning kan biologiska exemplar tillhandahålla direkta, pålitliga, exakta och intuitiva föremål och data för vetenskaplig forskning, vilket är av stor betydelse för att studera djurens och växternas liv, tillväxt och utveckling. Till exempel, när växttaxonomer systematiskt klassificerar olika växter, måste de ta växtprover som huvudbasis, analysera skillnaderna i forskningsobjekt i rot, stam, blad, blomma, frukt, frö och andra aspekter genom växtstandarder för att korrekt Bedöm deras egenskaper för att exakt identifiera varje växt. I undervisningen kan biologiska exemplar göra den kunskap som lärarna förklaras mer intuitivt och därmed fördjupas elevernas förståelse och kognition. När vi till exempel besöker djur- och växtmuseet kan vi se många värdefulla djur- och växtprover. Utställningen av dessa biologiska exemplar ger majoriteten av ungdomarna villkoren för att lära sig biologisk kunskap, förbättrar deras intresse för lärande och förbättrar också allmänhetens förståelse av naturen och skapar ett korrekt begrepp om djur- och växtskydd. Biologiska exemplar är de mest värdefulla permanenta posterna i mänskligt naturarv och spelar en oerättlig roll i vetenskaplig forskning, vetenskaplig kunskaps popularisering och mänskligt dagligt liv. Med tidens utveckling har människor gjort en övergång i användningen av naturresurser, och miljön har gradvis försämrats idag. Att bevara biologiska arter i form av exemplar är också av stor betydelse för framtida forskning om biologisk utveckling och utveckling.

I den experimentella klassen har vi alla använt biologiska bilder, och vi vet att biologiska bilder kan hjälpa oss att bättre studera och undersöka, men det finns oundvikligen vissa problem i processen att göra biologiska bilder. Låt oss nu förstå vilka problem som kommer att uppstå i processen att göra biologiska bilder. 1. Dehydrering, transparens, för lång vaxblötningstid och för hög temperatur kan orsaka vävnad sprödhet. Dessutom kan själva vävnadens struktur också orsaka vävnad sprödhet. Du kan försöka klippa medan du blåser luft till vaxskivan, vilket kan lindras. 2. Kniven är inte skarp, knivvinkeln är för stor och glasskivan är för tjock, vilket kan leda till att glasskivan rullas upp. 3. Om bladet är ojämnt, glidkniven är inte rak, och glidkniven är inte parallell med vaxblocket, kan vaxet böjas. 4. Om kniven inte är klämd med knivbasen och vaxblocket, kommer tjockleken att vara ojämn om vävnaden är för hård, och glidmaskinspindeln är för framåt, eller glidmaskinen har slitits. 5. Sprickorna på glasskivan kan orsakas av knivgapet, föroreningar i paraffin, förkalkning, benfragment eller trådbundna knop i vävnaden eller bomullspappersfibrer. 6. Dålig vävnadsuttorkning kan leda till fenomenet att glasskivorna inte är anslutna, inte kan stängas av, glasskivorna är mycket tjocka, eller vaxblocken bakom glasskivorna är vita, invaginerade, etc. Det finns fortfarande många problem i den faktiska operationen. Om du är intresserad av denna aspekt kan du följa oss för mer information.

För att göra ett bra fryst avsnitt, säkerställa kvaliteten på sektionen och samtidigt förbättra noggrannheten för snabb patologisk diagnos under operationen har den en bra relation med förståelsen och valet av den frysta sektionsmaskinen. Den frysande skivan består av en skivanordning och ett kylsystem. I allmänhet består ett komplett frysskivningssystem av en värdmaskin (frysbox, provhuvud, snabb frysbord, etc.), en verktygshållare och ett blad. Hur standardiserar man driften av den frysta skivan? Låt oss ta en titt 1. Kontrollera först om instrumentet är ordentligt och stabilt placerat, om anslutningen mellan strömkontakten och uttaget är tillförlitligt och om jordningen är bra. Ett visst gap lämnas kvar för att underlätta ventilation och värmeavledning och om spänningen är normal. 2 är påslagen i 24 timmar och är i det normala starttillståndet, så länge det kalla bordets kylning startas på jobbet och stängs av på jobbet). 3. Skivningsprocedur: Lägg "prov" -provet med inbäddningsmedel på provhuvudet, placera det på den snabba frysningstabellen för "snabb frysning", lås "skivningshandhjulet". Efter ett tag, fixa det frysta exemplet med provklämman, reparera exemplet först, skiva sedan och lappa. 4. Fördjupa lappen i "Acetic Alcohol Solution" för att "fixa". 5. De snittproverna ska numreras och lagras för standby eller användas i nedströmsprocessen. 6. Avstängningsförfarande - Lås handhjulet, rengör frysen, öppna frysens dörr och skär av strömbrytaren. Den här maskinen är en kontinuerlig arbetsmaskin, som är på kontinuerligt. Generellt stängs det inte av. När den inte används på kort tid, stäng av kylningen av kylbordet och ställ in frysens temperatur över 0 ℃ för att stoppa.

(1) Kvaliteten på materialen kommer direkt att påverka skivans kvalitet. När de tar material bör läkarna ha en skarp materialkniv tidigare för att undvika att dra materialkniven fram och tillbaka, och det är bättre att klippa parallellt med fibern så mycket som möjligt när de tar material; (2) Fixering är en del av arbetet i det tekniska rummet, och även en oåterkallelig del av hela produktionsprocessen. Fixering är att förhindra vävnadsceller från autolys och korruption, förhindra nedbrytning av proteiner av enzymer i celler och hålla sin ursprungliga struktur liknar livet (3) Vattentvätt efter fixering ignoreras vanligtvis av många människor, och ofullständig tvätt är lätt att orsaka dålig färg på stödplattan och färgning; (4) Dehydrering är att använda en dehydrator för att ersätta vattnet i vävnaden, vilket bidrar till penetrering av organiska lösningsmedel. Huruvida uttorkningen är komplett eller inte är direkt relaterad till om vävnaden kan vara helt transparent och överdriven uttorkning är lätt att orsaka spröd vävnad; (5) Om du vill klippa en skiva väl bör du ha en skarp skivkniv tidigare. Slipkniv är en relativt grundläggande teknik för skivtekniker. Kvaliteten på knivslipning är direkt relaterad till skivans kvalitet; (6) Färgningstiden ska bestämmas enligt det gamla och nya bränslet, temperaturen och typen av chips. Chips kan blåsas med varmt vatten eller kranvatten och tvättas fullt ut för att förhindra blekning orsakad av saltsyrarester; (7) Gummi på täckarket ska inte vara för tunt. Vid tätning av arket ska tandköttet vara jämnt fyllt med täckarket och tandköttet ska inte flyta över. Vävnaden ska täckas helt utan bubblor och märkas. Etiketten måste klistras in på vänster eller höger sida av bilden. Numret kan skrivas ut först efter att det är tydligt skrivet

Genom små biologiska skivor kan vi förstå biologiska egenskaper. Biologisk undervisningsskiva har viktigt värde i biologisk undervisning och spelar en roll som ett intuitivt undervisningsverktyg. Paraffinsektion kallas också permanent sektion, som huvudsakligen är lämplig för sektionen i olika växtvävnader. Avsnittets tjocklek är lätt att kontrollera, tydligheten är bra och den kan göras till kontinuerliga sektioner, som är lätta att bevara under lång tid. Tillverkaren av paraffinskivor berättar hur du bevarar växtparaffinskivor. Lägg observationsmaterialet i ett specifikt fixativ så snart som möjligt, döda dess celler snabbt och försök att hålla det i dess naturliga liv. När materialet är fixerat måste det bevaras för användning. I denna process krävs materialets struktur att inte förändras. Det vanligt förekommande konserveringslösningsmedlet är 70% alkohollösning, vilket kan hindra vanliga material från att bli dåliga under lång tid. Det krävs också att lagras i kylen. Användning av alkoholkoncentration: Fixa svaga och mjuka växter med alkohol med låg koncentration, såsom 50%; Använd 70% alkohol för att fixa äldre eller hårdare material. Om växtembryomaterial är fixerade kan formeln modifieras till 50% alkohol 89 ml+glacial ättiksyra 5 ml+formaldehyd 40% för lagring De fyra sidorna av den biologiska vävnadsskivan är fixerade utan krympning och deformation, och den släta ytan på plexiglaset på båda sidor skyddar de två sidorna av den fasta skivan, vilket är bekvämt för att observera den inre strukturen i den biologiska vävnaden.

Fluorescensmikroskop är ett grundläggande verktyg för immunofluorescenscytokemi. Det består av ljuskälla, filterplattesystem, optiskt system och andra huvudkomponenter. Observera med vanligt optiskt mikroskop. Slidprover är vanligtvis färgade med hematoxylin -eosin, ibland med speciell färgning. Först och främst bör det optiska mikroskopet hålla det naturliga tillståndet för de biologiska materialen så långt som möjligt för att undvika artefakter, deformation och distorsion, så de biologiska materialen måste fixas; Filmen måste vara tunn och transparent innan den kan avbildas under det optiska mikroskopet. Förutom att skära materialet i tunna skivor eller sprida det med ljuspressning eller andra medel, måste andra metoder användas för att göra det transparent och färgat, för att bättre observera detaljerna i strukturen. I själva verket kan alla biologiska material erhålla prover som uppfyller kraven i tjocklek och transparens genom paraffininbäddning, skivning (eller smetning), vidhäftning, vaxupplösning, transparens och andra processer och sedan erhålla en viss grad av kontrast genom färgningsprocedurer. Den biologiska skivan klistras ofta på glasskivan med en standardstorlek på 26x76 mm och en tjocklek på 1,1 ^ - 1,3 mm. De två sidorna på glasskilden bör vara parallella plan. Kravet på tjockleken på glasskilden är inte särskilt strikt, men när dess tjocklek överskrider det fria arbetsavståndet för vissa samlare med högre korrigeringsgrad blir tjockleken på glasbilden viktig för att fokusera ljuskällan och bilda bilden på bilden Fältstopp på objektplanet. I detta fall är en glasskiva med en tjocklek av 0,9 ^ - 1,0 mm lämplig.

Fluorescensmikroskop är en punktljuskälla med hög lysande effektivitet, som avger ljus av en viss våglängd (såsom ultraviolett ljus 3650 eller Violet Blue Light 4200) som excitationsljus genom filterfärgsystemet. Efter excitation avger fluorescerande ämnen i provet fluorescens i olika färger och observerar sedan genom amplifieringen av objektivlinsen och okularet. På detta sätt, under den starka kontrastbakgrunden, är till och med fluorescensen mycket svag, det är lätt att känna igen och känsligheten är hög. Det används främst för att studera cellstruktur och funktion och kemisk sammansättning Ljuskällan för ett fluorescensmikroskop fungerar inte som en direkt belysning, utan som en energikälla för att stimulera det fluorescerande materialet i provet. Anledningen till att vi kan observera provet är inte belysningen av ljuskällan, utan fluorescensfenomenet som presenteras av det fluorescerande substansen i provet efter absorptionen av den upphetsade ljusenergin. Det kan ses att det huvudsakliga kännetecknet för fluorescensmikroskopi är att dess ljuskälla kan ge en stor mängd excitationsljus i ett specifikt våglängdsområde, så att de fluorescerande substanserna i provet kan erhålla den nödvändiga intensiteten av excitationsljus. Samtidigt måste fluorescensmikroskop ha motsvarande filtersystem. Fluorescensmikroskop är ett speciellt verktyg för detektion av fluorescensmikroskop, det är ett slags ljusmikroskop. Förutom den grundläggande strukturen och optiska förstärkningen av optisk mikroskopi har den också följande unika funktionella krav baserade på fluorescensegenskaper: (1) En ljuskälla som ger tillräckligt med energi för att locka fluorescens. (2) Med en uppsättning färgfilter för att anpassa sig till excitationsspektrumet som krävs av olika ämnen väljs det lämpliga excitationsspektrumet från ljuskällan, så att spektrumet utfällt sammanfaller med absorptionsspektrumet för ämnet för att erhålla substansen maximal fluorescens. ( 3) ) För att få en svag fluorescensbild bör en uppsättning avstängningsfärgfilter också upprättas, vilket gör att den observerade fluorescensen krävs in i systemet för avbildning, och resten av ljusvågorna, inklusive de emitterade Ljus är blockerade för att förbättra bildfodret. ( 4 ) Det amplifierade optiska systemet bör anpassa sig till egenskaperna hos fluorescens och slutligen få en god fluorescensbild med hög ljusstyrka och hög upplösning som kan observeras och fotograferas. (5) Instrumentets säkerhet. Tillämpningen av kvicksilverlampa är nödvändig för att förhindra läckage av ultraviolett ljus och kvicksilverlampexplosion för att säkerställa säkerheten för elektriska apparater.

För små insekter som hoppare, loppor och planthoppare bör nålarna inte sättas in direkt, men speciella metoder bör användas. 1 . Dubbelinterpolation Nålstorleken 00 är tunn och kort, med en skarp spets och ingen nållock. Det används speciellt för att punktera små och hårda insekter. Insektskroppen plockades upp med små pincett, och provet punkterades vertikalt med mikronål enligt vanlig nålläge och infördes på ett litet triangulärt korkblock eller hårt papper. Sedan infördes insektsnålar över nr 1 nära den nedre kanten av det triangulära papperet, och sedan fixerades insektsläget med ett trestegssteg. Provet och etiketten infogade var belägna på vänster sida av insektsnålen. 2. Worm Interpolation Skär kartongen i ett litet isosceles triangulärt kort med underkantlängden på 0,4 cm och höjden på 1 cm. Doppa spetsen på en insektsnål i latex och peka den försiktigt på spetsen på det triangulära kortet. Lim sedan insektskroppen med spetsen på nålen och placera den på latexen och dra snabbt tillbaka nålen för att undvika att plocka upp insektskroppen. Nyckelpunkten med denna operation är att det inte bör finnas för mycket latex på nålspetsen. Om det limmade provet måste vara upprätt kan insektsspetsen användas för att omröras. Slutligen kan insektsnålen sättas in nära den nedre kanten av triangelfilmen, och insektsläget kan fixas med ett trestegssteg, och etiketten kan sättas in i provrutan för långvarig lagring.

Med människors forskning om biologi, för att observera den experimentella strukturen, måste fler och mer experimentella artiklar skivas för experimentell observation. Därför har olika biologiska läkemedelsexperimentella skärmaskiner dykt upp. Framväxten av skivmekanismer har hjälpt människor att bearbeta olika experimentella prover. För att underlätta observation av den experimentella strukturen behöver människor inte bara förbehandla testproverna, utan också för att skära tjockleken exakt. Skivningsmetod är att använda skarpa skärverktyg för att skära vävnad i extremt tunna skivor. Materialet måste genomgå en serie speciella behandlingar, såsom fixering, uttorkning, inbäddning, skivning, färgning, etc. Processen är mycket komplicerad. I produktionsprocessen måste den också genomgå en serie fysiska och kemiska behandlingar, som rimligen kan väljas enligt egenskapens krav för olika material. Även om processen för sektionering är besvärlig och tekniken är komplex, kan den bäst behålla det normala förhållandet mellan celler och bevara det ursprungliga utseendet på celler under en bättre och längre tid, så det är fortfarande huvudmetoden för att göra ljusmikroskopi. De befintliga skivorna använder vanligtvis manuell skivning. Stabiliteten och noggrannheten för skivning är låg och skivningens tjocklek kan inte vara konsekvent. Det är en biologisk skivanordning som är lätt att använda, flexibel att använda och bekvämt för att förbättra stabiliteten och noggrannheten för skivning. För närvarande finns det vanligt använda biologiska vävnadsskivor, paraffinskivor, frysta skivor och så vidare. Den biologiska vävnadsskivern är känd för sin höga noggrannhet och stabilitet. Den matas av en stegmotor, har funktionerna för provtagning och skivräkning och är exakt placerad på provhuvudets x / y -axel. Slicernas arbetsprincip är relativt enkel, det vill säga genom att använda den skarpa skärytan på skivan, föremål och material skärs i bitar enligt en punkts proportion eller bredd. För att vara lämplig för produktion eller farmaceutisk eller annan användning. Det huvudsakliga syftet med den biologiska skivan är att skära material såsom läkemedel, cellvävnader och vaxer för att underlätta deras nästa process.

1. Fixering av stift Generellt samlas färska exemplar efter giftdödning. Om proverna är torra och hårda, bör de placeras i en mjukgörare i 1-2 dagar innan nålen sätts in för att fixa maskarna; Ta försiktigt ut insekterna från mjukgöraren med pincett och lägg dem på hela hållningssteget och undviker att röra med händerna så långt som möjligt; Välj motsvarande insektsnål beroende på insektskroppens storlek, sätt in insektsnålen från den något till höger om mittlinjen på baksidan av insekts kroppen och passera den ut från buken, i allmänhet gör nålen mitt i två fötter. 2. Sprid sina vingar och räta ut sin hållning Fjärilar, sländor och andra insekter måste sprida sina vingar. När du sprider vingarna ska du först sätta in provet med nålen i spridplattan försiktigt, så att insektskroppen faller i spåret och vingarna och spridplattan är i horisontellt läge. Utveckla sedan vingarna med pincett för att göra den bakre kanten på de främre vingarna vinkelrätt mot kroppen. När vingarna har anpassats till det perfekta läget, tryck på vingarna med strippapper i ena handen och sätt in stiftet runt strippapperet i den andra hand kan kombineras nära för att fixa vingarna. När du har spridit dina vingar, justera positionen för din antenner, fötter och buk så är du klar. 3. Torkning och lagring Efter att provet har slutfört ovanstående åtgärder är det nästan klart. Resten är att torka provet. Generellt kan den torkas i en konstant temperaturlåda vid 50 ° C i ungefär en vecka. Om det inte finns någon torkbox kan den också placeras på en inomhusventilerad plats för torkning. Efter torkning kan provet lagras i provet. Provrutan ska förvaras på en ventilerad och torr plats. Varje prov representerar ett liv, som bör vårdas och användas. Observera till exempel noggrant sin form och försök att klassificera och bedriva annan vetenskaplig forskning.

Paraffinsektion är den mest använda metoden i konventionella histologiska tekniker. Det används inte bara för att observera den morfologiska strukturen hos normala celler och vävnader, utan också den huvudsakliga metoden som används av patologi, kriminalteknisk medicin och andra discipliner för att studera, observera och bedöma de morfologiska förändringarna av celler och vävnader, och har använts allmänt i Många andra discipliner och fält. Paraffinavdelningsmetoden inkluderar stegen för materialekstraktion, fixering, tvätt och uttorkning, transparens, vaxdersion, inbäddning, sektionering och klistra, dewaxing, färgning, uttorkning, transparens och tätning. Paraffinsektioner används vanligtvis för han färgning eller IHC. Tjockleken är tunnare, i allmänhet 4um, processen är mer komplex, och kvaliteten på provet beror på typen och sammansättningen av olika vävnader, vilket är mer beroende av tillverkarens upplevelse. Det måste ständigt optimeras i den experimentella processen för att få de bästa experimentella förhållandena.

Förstoringen av vanligt biologiskt mikroskop kan nå 1000-1600 gånger. Generellt sett kan mikroorganismer som svampar och jästar relativt stora, och goda resultat kan erhållas med lågkraft objektivlins och högeffektiva objektiv. För att se morfologin hos färgade bakterier och den morfologiska strukturen hos eukaryota celler är det emellertid bäst att använda en oljelins. Oljelins är ett slags objektivt objektiv av mikroskop. Det fullständiga namnet är oljefärgat objektivlins. Mediet för mikroskopens objektivlins inkluderar luft, vatten och olja. De två senare används för högupplösta objektivlins. Behärska rätt användning av oljespegel 1. När du använder oljelinsen, släpp först asfalt på glasskivan för att öka ljuset som kommer in i oljelinsen, förbättra synfältets ljusstyrka och gör objektbilden tydligare. 2. Lägg mikroskopet upprätt på bordet och böj inte spegelarmen för att luta scenen för att undvika spill av asfalt, som påverkar observationen och förorenar bordet. 3. Sikta När naturligt ljus används som ljuskälla bör planreflektor användas; Om konstgjort ljus används ska konkav spegel användas. Öppna först bländaren och rotera reflektorn för att koncentrera ljuset på ljussamlaren. Du kan flytta ljussamlaren upp och ner och skala bländaren efter behov för att få bästa ljusstyrka. 4. Fokusjustering: ① Placera provet på scenen, fixa det med provets pusher och flytta den del som ska undersökas under objektivlinsen. Ta först ut provets position med låg effektlins, höja sedan linsfatet, släpp en droppe linolja på provet som ska testas och ändra sedan oljelinsen för observation. ② Vrid den grova justeraren för att långsamt höja scenen (eller gradvis sänka linsfatet) tills oljelinsen är nedsänkt i oljan. För närvarande bör ögonen observeras från sidan för att undvika att krossa provet och skada linsen. ③ Flytta sedan båda ögonen till okularet, observera från okularet och rotera långsamt den grova justeraren (sänka scenen eller höja linsfatet) i motsatt riktning. När det finns en suddig objektbild, ändra till den fina justeraren och rotera tills objektbilden är klar. ④ Efter observation bör linsfatet först höjas och oljelinsen ska vridas till ena sidan innan man tar ner provet. När oljelinsen används ska oljan på linsen torkas omedelbart med linset torkpapper. Om linsoljan är torr på linsen, kan linsen torkas med lite xylen doppad i linsen torkar papper, och då kan den återstående xylenen torkas av med torrlinspapperet för att förhindra att xylenen tränger igenom och löser upp tandköttet Används för att fixa linsen, vilket får linsen att växla eller falla av.

Permanenta bildprover kan hållas och användas permanent. Integrerad belastningsmetod: Det är en metod för att försegla hela den lilla organismen eller en del av organet för att göra ett bildprov. Denna metod är generellt tillämplig på organismer eller organ med liten kropp eller en tunn kropp, såsom unicellulära alger, filamentösa alger, svampar, mjuka bryofyter, protoplaster och sporangia av ormbunkar, epidermis av högre växter, blommor och pollenkorn, protozoans, vingar, vingar, antenner, fötter av insekter och kycklingembryon Uppmärksamhet ska ägnas åt: (1) När den håller på bilden ska den hållas platt eller placeras på plattformen. Vid droppande vatten bör mängden vatten vara lämplig för att bara täckas av täckglaset. (2) Materialen ska utvecklas på samma plan utan att överlappa med dissekerande nål eller pincett. (3) När du placerar täckglaset täcker du det långsamt på vattenfallet från ena sidan för att förhindra bubblor. (4) Vid färgning, lägg en droppe färgvätska på ena sidan av täckglaset och suga det från andra sidan med absorberande papper för att göra provet under täckglaset enhetligt färgat. Efter färgning använder du samma metod, släpp en droppe vatten, suga ut färgningslösningen och observera den under mikroskopet.

1. Olika komponenter Elektronmikroskopet har tre delar, nämligen linsfatet, vakuumanordningen och kraftskåpet. Det optiska mikroskopet består huvudsakligen av fyra delar, nämligen objektiv lins, okular, reflektor och kondensor. 2. Bildprincipen är annorlunda. Ett elektronmikroskop använder en elektronstråle för att penetrera ett prov och förstorar sedan bilden med en lins. Det optiska mikroskopet använder huvudsakligen förstoringsprincipen för konvex lins för att förstora provet. 3. Illumineringskällan är annorlunda. Den belysningskällan som används av elektronmikroskopet är det elektronflödet som släpps ut av elektronpistolen; Belysningskällan för det optiska mikroskopet är synligt ljus (solljus eller ljus). Eftersom våglängden för elektronflödet är mycket kortare än ljusvågens våglängd är förstoringen och upplösningen för elektronmikroskopet betydligt högre än för ljusmikroskopet. 4. Linserna är olika. Mållinsen för förstoring i elektronmikroskopet är en elektromagnetisk lins (en ringformad elektromagnetisk spole som kan generera ett magnetfält vid den centrala delen); Mållinsen för ett optiskt mikroskop är en optisk lins gjord av glas. Det finns tre grupper av elektromagnetiska linser i elektronmikroskopet, som är ekvivalent med kondensorns objektiv, objektivlins och okularslins i den optiska linsen. 5. Olika användningar På grund av dess höga upplösning kan elektronmikroskopet användas för att observera den fina materialstrukturen som inte kan särskiljas med det vanliga mikroskopet och kan också användas för att analysera materialkompositionen. Det optiska mikroskopet används huvudsakligen för observation av mikroskopiska material inom biologi och medicin och som ett experimentellt verktyg för studenter i undervisning.