Новости

Отбор проб ткани является одной из важных процедур для изготовления срезов. Согласно конкретным требованиям обучения, научным исследованиям и внешней проверке, ткань взята у человека или животного, а также определяется местоположение и метод отбора проб. Конкретные требования следующие: 1. Свежие материалы для обеспечения исходной морфологической структуры 2. Размер блока ткани Идеальный объем тканевого блока составляет 2,0x2,0x0,3 см, так что фиксатор может быстро и равномерно проникать в ткань 3. Не сжимайте блок ткани. Лезвие тканевого блока должно быть острым. Не зажимайте ткань слишком плотно, чтобы избежать деформации ткани и клеток из -за экструзии. 4. Стандартизируйте положение отбора проб. Отбор проб должен быть точным в соответствии с анатомическим положением и стандартизирована в соответствии с требованиями. 5. Выбор секции тканевого блока определяет направление его секции в соответствии со структурой каждой ткани. Продольные и поперечные срезы часто являются ключом для демонстрации морфологической структуры ткани. 6. Держите материал в чистоте. Если в тканевой блоке есть грязь, слизь и т. Д., Он может быть очищен водой, прежде чем положить в фиксационный раствор. 7. Держите исходную форму ткани. После фиксации свежей ткани большая часть ткани уменьшится, иногда даже полностью деформируется. Следовательно, выравнивайте ткани, чтобы как можно больше поддерживать прототип.

В нашей повседневной жизни мы подвергаемся воздействию всех видов растений, особенно растений для семян, включая сосну, пихту, кипарику, гинкго и всевозможные цветущие и плодоносные растения. Чтобы систематически изучать классификацию заводов, мы можем использовать образцы растений. Образцы растений можно разделить на следующие категории в соответствии с целью использования (1) Филогенетический образец: Цель подготовки состоит в том, чтобы наблюдать и изучать историю жизни растения, то есть рост растения на каждой стадии от прорастания семян до роста, развития, цветения и плодоношения. Он обычно используется в биологическом обучении, введении, культивировании и научных исследованиях. (2) Целый образец: обычно используется для идентификации растений, научных названий и китайских травяных лекарств. Этот образец также используется для обследования растительности в области. Например, исследуйте растительные ресурсы школы или горы. Корни, стебли, листья и другие вегетативные органы более высоких растений являются одной из оснований для идентификации растений, но они часто различаются из -за различных сред. Цветы и фрукты имеют относительно стабильную наследственность, которая может наилучшим образом отражать неотъемлемые характеристики растений и являются важной основой для идентификации и выявления растений. При сборе образцов попробуйте собрать образцы с полными корнями, стеблями, листьями, цветами и фруктами. Травы также должны быть выкопаны под землей. Форма и расположение спорангии, корневища, масштабов и индуктора являются важными таксономическими характеристиками папоротников, на которые следует обратить внимание при сборе. Весь образец часто превращается в образец воскового листа и образец первичного цветового погружения. (3) Анатомический образец: Цель подготовки состоит в том, чтобы наблюдать и изучать внутреннюю организационную структуру органа растения. Например, рассечь луковицу лука, чтобы наблюдать за структурой основания, зачатки, масштабного листа, волокнистого корня и т. Д. Плацентация латеральной мембраны и положение семян огурцов наблюдалось путем поперечного рассечения; Персиковой цветок был продольный продольный, чтобы наблюдать за его различными частями и морфологией. Чтобы собрать этот вид образца, вам нужно только выбрать здоровый и представительный орган, а не собирать всю ветку. Анатомические образцы обычно превращаются в антисептические пропитанные образцы. (4) Образец сравнения: образец сравнения в основном используется для сравнения сходства и различий органа разных растений. Например, чтобы сравнить морфологию семян дикотидонов и монокотидонов, необходимо собрать зрелые плоды изнасилования, сои, огурца, помидоров и т. Д. и кукуруза для сравнения. Образец сравнения можно превратить в образцы восковых листьев или высушенный воздух образец, а фрукты, пропитанные первичным цветом, лучше.

Правильное содержание микроскопа может продлить срок службы микроскопа. Сегодня я объясню, как очистить оптическое стекло. Существует два типа очистки стеклянной поверхности: поверхность очистки и технологии технологий атомного уровня. Очистка атомного уровня требуется для специальных научных применений, поскольку ее необходимо выполнять в условиях ультра вакуума. Как правило, для удовлетворения требований к обработке продуктов требуется только чистая поверхность в технологии процессов. Оптическое стекло используется для линз, призмы, линз и т. Д. Приборов. При производстве и использовании легко получить жирную грязь, воду влажную грязь, отпечатки пальцев и т. Д., что влияет на визуализацию и пропускание света. Чтобы очистить оптическое стекло, различные чистящие средства, инструменты и методы должны быть выбраны в соответствии с характеристиками и структурой грязи. Очистите линзу, покрытую антирефлекционной пленкой, такой как камера, слайд -проектор и линза микроскопа, и используйте около 20% спирта и 80% эфира в качестве чистящего агента. При очистке используйте мягкую щетку или ватный шарик, окунутый небольшим количеством чистящего агента, чтобы сделать круговое движение из центра объектива наружу. Не погружайте такие линзы в чистящий агент для очистки и не вытирайте их при очистке, в противном случае антирефлекционная пленка будет повреждена, а объектив будет поврежден. Существует много методов очистки стеклянной поверхности, и один из них может быть выбрана или объединена в соответствии с исходной степенью загрязнения стеклянной поверхности, последующим процессом обработки стекла и целью конечного продукта. Масляный туман, водяной мокрое туман и нефтяной воде, смешанный туман на оптическом стекле, также могут быть очищены с помощью чистящего агента, а метод очистки аналогична методу линзы. Плесень на поверхности оптического стекла является распространенным явлением. Когда оптическое стекло заплесневелое, свет будет разбросан на его поверхности, что делает изображение размытым, а в серьезных случаях инструмент будет отменен. Причиной плесени оптического стекла является то, что на ее поверхности есть микробные споры. Когда температура и влажность подходят и необходимы «питательные вещества», она будет быстро расти и образует пятна плесени. Особенно важно сделать оптическую стеклянную анти -милью и противообрать. После того, как мучнистая роса произойдет, ее следует немедленно очистить. Обратите внимание на сухость.

Образец для замачивания растений предназначен для хранения свежих растений в растворе, приготовленных химическими веществами, чтобы можно было наблюдать исходный цвет и форму растений. Образец замачивания растения имеет хороший эффект сохранения и длительное время сохранения, восстанавливая исходный яркий цвет растений. Он имеет много преимуществ и обеспечивает важную научную основу для исследования растений. Как вымачивание образца поддерживает исходный цвет растений? Причина, по которой растения зеленые, заключается в том, что хлоропласты растений содержат хлорофилл. Хлорофилл является сложным органическим соединением. В центре его молекулярной структуры есть металлический атом магния. Причина, по которой хлорофилл является зеленым, заключается в том, что он содержит основную структуру атома магния. Если вы хотите сохранить оригинальный зеленый в растениях, вам нужно заменить ионы магния в хлорофилле медными ионами. Его метод состоит в том, чтобы использовать кислоту для отделения магния от молекул хлорофилла. В это время, поскольку хлорофиллу не хватает магния, растение становится коричневым. Затем замените ядро ​​магний молекулы хлорофилла на медь. Структура молекулы хлорофилла с атомом меди в качестве ядра очень стабильной, нелегко разложить и уничтожать и не растворим в спирте или формалине. Следовательно, образцы растений, обработанные таким образом, могут быть сохранены зелеными в течение длительного времени в растворе сохранения.

Образец воска, также известный как прессованный образец, является наиболее распространенным видом образец растений. Крайне важно правильно идентифицировать виды растений для создания образцов, которые могут поддерживать естественные и истинные морфологические характеристики растений. Преимущество образцов восковых листьев заключается в том, что их можно долго сохранить. Коллекция образцов восковых листьев с долгим историей в мире может быть даже прослежена до 16 -го века. Тем не менее, образец воскового листа, сделанный этим традиционным методом, исчез из -за разрушения хлорофилла и антоцианинов на растении. Кроме того, поскольку образец воскового листа использует процесс прессования, конечный продукт представляет собой плоское состояние, которое было исчезло в коричневый желтый и фиксированный на столешнике, который не является доминирующим с эстетической точки зрения. Процесс подавления является ключом к сочетанию исходных экологических характеристик растений с художественной красотой. Насущный эффект на месте является лучшим после сбора образца, но фактическая операция требует много времени и трудоемкой, что сложно. Следовательно, растение может быть помещено в самостоятельный пластиковый пакет. Чтобы предотвратить деформацию экструзии, необходимо надуть ремень, отметьте соответствующую информацию об сборе и вернуть ее для нажатия после герметизации. Для растений, которые являются тонкими и уязвимыми для потери воды, они должны быть подавлены на месте, чтобы точно описать характеристики растений. Поместив растения в папку образца, попробуйте распространить корни, ветви, листья, цветы и фрукты и переверните их частично, чтобы лучше понять характеристики образца.

Использование биологических образцов разнообразно и играет важную роль в научных исследованиях и биологическом обучении. Кроме того, они также имеют большое значение в рисунке, выставке, просмотре и т. Д. Для научных исследований биологические образцы могут предоставлять прямые, надежные, точные и интуитивные объекты и данные для научных исследований, что имеет большое значение для изучения законов жизни, роста и развития животных и растений. Например, когда таксономисты растений систематически классифицируют различные растения, они должны принимать образцы растений в качестве основной основы, анализируют различия исследовательских объектов в корне, стебле, листьях, цветах, фруктах, семенах и других аспектах через стандарты растений, чтобы правильно правильно Судите их характеристики, чтобы точно определить каждое растение. В преподавании биологические образцы могут сделать знания, объясняемые учителями более интуитивно демонстрируемыми, тем самым углубляя понимание и познание учащихся. Например, при посещении музея животных и растений мы можем увидеть много драгоценных образцов животных и растений. Выставка этих биологических образцов предоставляет большинству молодых людей условия для изучения биологических знаний, улучшает их интерес к обучению, а также улучшает понимание общественности природы и устанавливает правильную концепцию защиты животных и растений. Биологические образцы являются наиболее ценными постоянными записями в области естественного наследия человека и играют незаменимую роль в научных исследованиях, популяризации научных знаний и повседневной жизни человека. С развитием времени люди сделали переход в использовании природных ресурсов, и окружающая среда сегодня постепенно ухудшилась. Сохранение биологических видов в форме образцов также имеет большое значение для будущих исследований в области биологического развития и эволюции.

В экспериментальном классе мы все использовали биологические слайды, и мы знаем, что биологические слайды могут помочь нам лучше изучать и исследовать, но в процессе создания биологических слайдов неизбежно возникают некоторые проблемы. Теперь давайте поймем, какие проблемы возникнут в процессе создания биологических слайдов. 1. Обезвоживание, прозрачность, слишком длинное время замачивания воска и слишком высокая температура могут вызвать хрупкость тканей. Кроме того, текстура самой ткани также может вызвать хрупкость ткани. Вы можете попытаться разрезать, взорвав воздух в восковой ломтик, что может быть облегчено. 2. Нож не острый, угол ножа слишком большой, а стеклянное скольжение слишком густое, что может привести к свернуты стекла. 3. Если лезвие неровное, слайд -нож не является прямым, а слайд -нож не параллелен воскому блоку, воск может быть согнут. 4. Если нож не зажимается с основанием ножа и восковым блоком, толщина будет неровной, если ткань слишком твердая, а шпиндель слайд -машины слишком вперед, или слайд -машина носит. 5. Трещины на стеклянном стекле могут быть вызваны зазором ножа, примесей в парафине, кальцификацией, фрагментами костей или проводными узлами в ткани или хлопковой бумажной волокнами. 6. Плохое обезвоживание тканей может привести к явлению, что стекло не подключены, не могут быть отрезаны, стеклянные горки очень толстые, или восковые блоки за стеклянными горками белые, инвагированные и т. Д. В реальной операции еще много проблем. Если вы заинтересованы в этом аспекте, вы можете следить за нами для получения дополнительной информации.

Чтобы сделать хороший замороженный раздел, обеспечить качество секции и в то же время повысить точность быстрого патологического диагноза во время операции, он имеет прекрасную связь с пониманием и выбором машины замороженного секции. Замораживающий Slicer состоит из устройства для нарезки и охлаждения. Как правило, полная система замерзания состоит из хост -машины (ящик для морозильной камеры, образец головки, быстрый замерзание и т. Д.), Держатель инструментов и лезвие. Как стандартизировать работу замороженного слайсера? Давайте посмотрим 1. Во -первых, проверьте, является ли инструмент твердо и стабильно размещен, является ли подключение между питательной пробкой и гнездой надежным, и является ли заземление хорошим. Определенного зазора остается для облегчения вентиляции и рассеяния тепла, и является ли напряжение нормальным. 2. Включите основной переключатель источника питания, проверьте/установите температуру морозильной камеры, температуру холодного стола, температуру головки образца и толщину среза и введите обычный интерфейс (как правило, эта машина включено в течение 24 часов и находится в обычном состоянии стартапа, так как охлаждение холодного стола начинается на работе и выключается на работе). 3. Процедура нарезки: поместите образцы «выборки» с помощью встроенного агента на головку образца, поместите его на быстрый заморозкий стол для «быстрого замораживания», заблокируйте «Ручное колесо». Через некоторое время почините замороженный образец с помощью зажима для образца, сначала отремонтируйте образец, затем нарежьте и нарезайте. 4. Погрузите пластырь в «уклеочный алкогольный раствор», чтобы «исправить». 5. Вырезанные образцы должны быть пронумерованы и хранятся в режиме ожидания или используются в нижнем процессе. 6. Процедура выключения - заблокируйте ручное колесо, очистите морозильник, откройте дверь морозильника и отрежьте выключатель питания. Эта машина представляет собой непрерывную рабочую машину, которая постоянно питается. Как правило, это не закрывается. Когда он не используется в течение короткого времени, выключите охлаждение холодного стола и установите температуру морозильника выше 0 ℃, чтобы остановиться.

(1) Качество материалов будет напрямую повлиять на качество срезов. Принимая материалы, врачи должны иметь острый материальный нож раньше, чтобы избежать перетаскивания материала взад -вперед, и лучше разрезать параллельно с волокном как можно больше при получении материалов; (2) Фиксация является частью работы технической комнаты, а также невозмутимой частью всего производственного процесса. Фиксация заключается в предотвращении аутолиза и коррупции ткани, предотвращает разложение белков ферментами в клетках и сохраняет их исходную структуру сходной с жизнью. (3) промывание воды после фиксации обычно игнорируется многими людьми, а неполное промывание легко вызвать плохой цвет опорной пластины и окрашивания; (4) Дегидратация - это использование дегидратора для замены воды в ткани, что способствует проникновению органических растворителей. Независимо от того, является ли обезвоживание завершено или нет напрямую связано с тем, может ли ткань быть полностью прозрачной, а чрезмерное обезвоживание легко вызвать хрупкие ткани; (5) Если вы хотите хорошо порезать ломтик, у вас должен быть острый нож нарезания раньше. Шлифовальный нож является относительно базовой технологией для техников нарезки. Качество шлифования ножа напрямую связано с качеством среза; (6) Время окрашивания должно определяться в соответствии с старым и новым топливом, температурой и типом чипсов. Чипсы могут быть применены теплой водой или водопроводной водой и полностью промыты, чтобы предотвратить выцветание, вызванные остатками соляной кислоты; (7) Жева наступительного листа не должна быть слишком тонкой. При герметике лист жевательная резинка должна быть равномерно заполнена защитной листом, а жевательная резинка не должна переполняться. Ткань должна быть полностью покрыта без пузырьков и помечена. Метка должна быть вставлена ​​слева или правой стороной слайда. Номер может быть напечатан только после того, как он четко записан

Через небольшие биологические срезы мы можем понять биологические характеристики. Биологический учебный срез имеет важную ценность в биологическом обучении и играет роль интуитивного инструмента обучения. Парафиновая секция также называется постоянной секцией, которая в основном подходит для участка различных растений. Толщина секции легко контролировать, четкость хороша, и ее можно превратить в непрерывные секции, которые легко сохранить в течение длительного времени. Производитель парафиновых срезов рассказывает вам, как сохранить кусочки парафина. Поместите материал наблюдения в определенном фиксаторе как можно скорее, быстро убейте его клетки и постарайтесь сохранить его в естественном состоянии жизни. После того, как материал был зафиксирован, его необходимо сохранить для использования. В этом процессе структура материала необходима не изменять. Обычно используемый растворитель для сохранения составляет 70% алкогольного раствора, что может не дать обычным материалам на долгое время. Также необходимо хранить в холодильнике. Использование концентрации алкоголя: исправить слабые и нежные растения с помощью спирта с низкой концентрацией, например, 50%; Используйте 70% алкоголя, чтобы исправить старые или более сложные материалы. Если материалы эмбриона растений фиксируются, формула может быть модифицирована до 50% спирта 89 мл+ледяная уксусная кислота 5 мл+формальдегид 40% для хранения Четыре стороны биологического срезов ткани фиксируются без усадки и деформации, а гладкая поверхность плексигласа с обеих сторон защищает две стороны фиксированного среза, что удобно для наблюдения за внутренней структурой биологической ткани.

Флуоресцентный микроскоп является основным инструментом иммунофлуоресцентной цитохимии. Он состоит из источника света, системы фильтров, оптической системы и других основных компонентов. Соблюдайте с обычным оптическим микроскопом. Образцы слайдов обычно окрашиваются гематоксилином эозином, иногда с особым окрашиванием. Прежде всего, оптический микроскоп должен сохранять естественное состояние биологических материалов как можно дальше, чтобы избежать артефактов, деформации и искажения, поэтому биологические материалы должны быть фиксированы; Пленка должна быть тонкой и прозрачной, прежде чем ее можно будет отображать под оптическим микроскопом. В дополнение к разрезанию материала на тонкие срезы или рассеивание его легкими или другими средствами, другие методы должны использоваться, чтобы сделать его прозрачным и окрашенным, чтобы лучше наблюдать за деталями структуры. Фактически, все биологические материалы могут получать образцы, которые отвечают требованиям толщины и прозрачности посредством встраивания парафина, нарезки (или смазывания), адгезии, растворения воска, прозрачности и других процессов, а затем получать определенную степень контраста посредством процедур окрашивания. Биологический срез часто наклеждается на стеклянном слайде стандартным размером 26x76 мм и толщиной 1,1 - 1,3 мм. Две стороны стеклянной слайда должны быть параллельными плоскостями. Требование к толщине стеклянного слайда не очень строго, но когда его толщина превышает свободное рабочее расстояние некоторых коллекционеров с более высокой степенью коррекции, толщина стекла становится важной для фокусировки источника света и формирования изображения Полевая остановка на плоскости объекта. В этом случае стеклянное скольжение с толщиной 0,9 ^ - 1,0 мм подходит.

Флуоресцентный микроскоп является точечным источником света с высокой световой эффективностью, который излучает свет определенной длины волны (например, ультрафиолетовый свет 3650 или фиолетовый синий свет 4200) в качестве света возбуждения через цветовую систему фильтра. После возбуждения флуоресцентные вещества в образце испускают флуоресценцию разных цветов, а затем наблюдают за усилением объективной линзы и окуляра. Таким образом, на сильном контрастном фоне, даже флуоресценция очень слаба, ее легко распознать, а чувствительность высока. В основном используется для изучения структуры и функции клеток и химического состава Источник света флуоресцентного микроскопа действует не как прямое освещение, а как источник энергии для стимуляции флуоресцентного материала внутри образца. Причина, по которой мы можем наблюдать, как образец, - это не освещение источника света, а флуоресцентное явление, представленное флуоресцентным веществом в образце после поглощения энергии возбужденного света. Можно видеть, что основная характеристика флуоресцентной микроскопии заключается в том, что его источник света может обеспечить большое количество возбуждения света в определенном диапазоне длины волны, так что флуоресцентные вещества в образце могут получить необходимую интенсивность света возбуждения. В то же время флуоресцентный микроскоп должен иметь соответствующую систему фильтров. Флуоресцентный микроскоп является специальным инструментом для обнаружения флуоресцентной микроскопии, это своего рода легкий микроскоп. В дополнение к основной структуре и оптической амплификации оптической микроскопии, она также имеет следующие уникальные функциональные требования, основанные на характеристиках флуоресценции: (1) Источник света, который обеспечивает достаточно энергии для возбуждения флуоресценции. (2) С набором цветовых фильтров для адаптации к спектру возбуждения, требуемого различными веществами, соответствующий спектр возбуждения выбирается из источника света, так что спектр осаждается совпадает со спектром поглощения вещества, чтобы получить максимальная флуоресценция. ( 3) , чтобы получить слабое флуоресцентное изображение, также должен быть установлен набор отключенного цветового фильтра, что заставляет необходимую наблюдаемую флуоресценцию входить в систему для визуализации, а остальные световые волны, включая испускаемые Свет, заблокирован, чтобы улучшить подкладку изображения. ( 4 ) Усиленная оптическая система должна адаптироваться к характеристикам флуоресценции и, наконец, получить хорошее флуоресцентное изображение с высокой яркости и высоким разрешением, которое можно наблюдать и сфотографироваться. (5) Безопасность инструмента. Применение ртутной лампы необходимо для предотвращения утечки ультрафиолетового взрыва света и ртути, чтобы обеспечить безопасность электрических приборов.

Для небольших насекомых, таких как прыгуны, блохи и Planthoppers, иглы не следует вставлять напрямую, но следует использовать специальные методы. 1 _ Двойная интерполяция Размер иглы 00 тонкий и короткий, с острым наконечником и без иглы. Он специально используется для прокола маленьких и твердых насекомых. Корпус насекомых поднимали небольшими щипцами, а образец прокол по вертикали с микроигл в соответствии с регулярным положением иглы и вставляли на небольшой треугольный пробковый блок или твердую бумагу. Затем иголы насекомых над № 1 были вставлены вблизи нижнего края треугольной бумаги, а затем положение насекомого было зафиксировано трехступенчатой ​​стадией. Образец и вставленные этикетки были расположены на левой стороне иглы насекомых. 2. Интерполяция червя Разрежьте картон на небольшую треугольную карту изобрантов с длиной нижнего края 0,4 см и высотой 1 см. Окуните кончик иглы насекомых в латекс и аккуратно укажите его на кончик треугольной карты. Затем приклейте корпус насекомых с кончиком иглы и поместите его на латекс и быстро снимайте иглу, чтобы не подбирать корпус насекомых. Ключевой момент этой операции заключается в том, что на кончике иглы не должно быть слишком много латекса. Если приклеенный образец должен быть в вертикальном положении, наконечник насекомых можно использовать для его размещения. Наконец, иглы насекомых можно вставить вблизи нижнего края треугольной пленки, а положение насекомого может быть зафиксировано трехступенчатым этапом, а метка может быть вставлен в ящик для образцов для длительного хранения.

С учетом биологии людей, чтобы наблюдать за экспериментальной структурой, для экспериментального наблюдения необходимо нарезать все больше и больше экспериментальных статей. Следовательно, появились различные биологические экспериментальные машины для резки. Появление механизмов нарезки помогло людям обрабатывать различные экспериментальные образцы. Чтобы облегчить наблюдение за экспериментальной структурой, людям необходимо не только предварительно обработать испытательные образцы, но и точно нарезать толщину. Метод нарезки состоит в том, чтобы использовать острые режущие инструменты для разрезания ткани на чрезвычайно тонкие ломтики. Материал должен пройти ряд специальных методов лечения, таких как фиксация, обезвоживание, встраивание, нарезка, окрашивание и т. Д. Процесс очень сложный. В процессе производства также необходимо пройти ряд физических и химических процедур, которые могут быть разумно отобраны в соответствии с требованиями недвижимости различных материалов. Хотя процесс секции является громоздким, а технология сложна, он может лучше всего поддерживать нормальную связь между клетками и сохранить первоначальный вид клеток в течение лучшего и более длительного времени, поэтому он по -прежнему является основным методом изготовления световой микроскопии. Существующие Slicers обычно используют ручное нарезку. Стабильность и точность нарезания низкие, а толщина нарезки не может быть последовательной. Это биологическое устройство Slicer, которое легко работать, гибкое в использовании и удобное для улучшения стабильности и точности нарезки. В настоящее время обычно используются биологические ткани, парафиновые слайсеры, замороженные слайсеры и так далее. Биологический ткани слайсер славится своей высокой точностью и стабильностью. Он питается ступенчатым двигателем, имеет функции отвлечения образца и подсчета срезов и точно расположен на оси x / y головки образца. Принцип работы SLICER относительно прост, то есть, используя резкую поверхность резания Slicer, объекты и материалы разрезаются на кусочки в соответствии с доли или шириной точки. Чтобы быть подходящим для производства, фармацевтического или другого использования. Основная цель биологического слайсера - нарезать материалы, такие как лекарственные материалы, клеточные ткани и воски, чтобы облегчить их следующий процесс.

1. Прикрепление фиксации вставки Как правило, свежие образцы после убийства ядов собираются. Если образцы сухие и твердые, их следует помещать в смягчитель в течение 1-2 дней, прежде чем иглу вставлена ​​для починки червей; Осторожно выньте насекомых у смягчителя с пинцетом и поместите их на всю стадию осанки, избегая прикосновения руками как можно дальше; Выберите соответствующую иглу насекомых в соответствии с размером тела насекомых, вставьте иглу насекомы две ноги. 2. распространять крылья и выпрямить позу Бабочки, стрекозы и другие насекомые должны распространять свои крылья. При распределении крыльев сначала вставьте образец с иглой в распределительную пластину, чтобы тело насекомого падало в канавку, а крылья и распространяющаяся пластина находятся в горизонтальном положении. Затем разверните крылья с щипцами, чтобы сделать задний край передних крыльев перпендикулярно телу. После того, как крылья отрегулированы в идеальное положение, нажмите крылья с полосатой бумагой в одной руке, и вставьте булавку вокруг полосовой бумаги в другой руке, но не в крылья, чтобы полоса может быть тесно объединено, чтобы исправить крылья. После распределения крыльев отрегулируйте положение ваших антенн, ног и живота, и вы будете готовы. 3. Сушка и хранение После того, как образец завершает вышеуказанные действия, он почти закончен. Остальное - высушить образец. Как правило, его можно сушить в постоянной температурной коробке при 50 ° C в течение недели. Если нет ящика для сушки, ее также можно помещать в внутреннее вентилируемое место для сушки. После сушки образец можно хранить в поле для образцов. Образец -коробка должна храниться в вентилируемом и сухом месте. Каждый образец представляет жизнь, которую следует лелеять и использовать. Например, тщательно соблюдайте его форму и попытайтесь классифицировать и проводить другие научные исследования.

Парафиновая секция является наиболее широко используемым методом в обычных гистологических методах. Он используется не только для наблюдения за морфологической структурой нормальных клеток и тканей, но и основного метода, используемого патологией, судебной медициной и другими дисциплинами для изучения, наблюдения и суждения морфологических изменений клеток и тканей, и широко используется в много других дисциплин и полей. Метод парафинового разреза включает в себя стадии извлечения материала, фиксации, промывки и дегидратации, прозрачности, погружения восков, встраивания, секции и вставки, дезакинга, окрашивания, обезвоживания, прозрачности и герметизации. Парафиновые секции обычно используются для окрашивания или IHC. Толщина более тонкая, как правило, 4um, процесс более сложный, а качество образца зависит от типа и состава различных тканей, что в большей степени зависит от опыта производителя. Он должен быть постоянно оптимизировать в экспериментальном процессе, чтобы получить лучшие экспериментальные условия.

Увеличение обычного биологического микроскопа может достигать 1000-1600 раз. Как правило, микроорганизмы, такие как грибы и дрожжи, относительно большие, и хорошие результаты могут быть получены с помощью объективной линзы с низким энергопотреблением и мощным объективным объективом. Однако, чтобы увидеть морфологию окрашенных бактерий и морфологическую структуру эукариотических клеток, лучше всего использовать масляную линзу. Масляная линза является своего рода объективной линзой микроскопа. Полное имя - окрашенная масляная объектив. Среда объективного объектива микроскопа включает воздух, воду и нефть. Последние два используются для объективного объектива с высоким разрешением. Освоить правильное использование масляного зеркала 1. При использовании масляной линзы сначала бросите асфальт на стеклянном стекле, чтобы увеличить свет, попадающий в масляную линзу, повысить яркость поля зрения и сделать изображение объекта более четким. 2. Положите микроскоп прямо на стол и не сгибайте зеркальное руку, чтобы наклонить стадию, чтобы избежать разлива асфальта, влияя на наблюдение и загрязняя стол. 3. Прицеливание Когда естественный свет используется в качестве источника света, следует использовать плоский отражатель; Если используется искусственный свет, должно использоваться вогнутое зеркало. Во -первых, откройте апертуру и поверните отражатель, чтобы сконцентрировать свет на коллекторе света. Вы можете перемещать коллектор света вверх и вниз и масштабировать диафрагму по мере необходимости, чтобы получить наилучшую яркость. 4. Корректировка фокуса: ① Поместите образец на сцену, исправьте его с помощью толкателя образца и переместите деталь, которая будет рассмотрена под объективной линзой. Сначала выясните положение образца с линзой с низкой мощностью, затем поднимите ствол линзы, снимите каплю линзы масла на образец, который должен быть проверен, а затем измените масляную линзу для наблюдения. ② Поверните грубую регулятор, чтобы медленно поднять сцену (или постепенно опустить ствол линзы) до тех пор, пока масляная линза не будет погружена в нефть. В это время глаза должны наблюдаться со стороны, чтобы избежать раздавливания образца и повреждения объектива. ③ Затем перемещайте оба глаза к окуляру, наблюдайте из окуляра и медленно вращайте грубую регулятор (понизите сцену или поднимите ствол линзы) в противоположном направлении. Когда есть размытое изображение объекта, переключитесь на тонкий регулятор и поверните, пока изображение объекта не станет ясным. ④ После наблюдения ствол линзы должен быть поднят первым, а масляная линза должна быть скручена на одну сторону, прежде чем снимать образец. После использования масляной линзы масло на объективе должно быть немедленно уничтожено с помощью линзы. Если масло линзы сухое на линзе, линзу можно вытерте небольшим количеством ксилола, окунутого в линзе, и затем можно вытерте остаточную ксилол, чтобы предотвратить проникновение ксилола и растворяющую резинку Используется для исправления объектива, заставляя линзу сдвинуться или упасть.

Образцы с постоянными слайдами можно сохранить и использовать навсегда. Метод интегральной загрузки: Это метод запечатывания всего крошечного организма или части органа, чтобы сделать слайд -образец. Этот метод, как правило, применим к организмам или органам с небольшим телом или тонким телом, таким как одноклеточные водоросли, нитевидные водоросли, грибы, мягкие бриофиты, протопласты и спорангии папоротников, эпидермис более высоких растений, цветочных и пыльцевых зерно антенны, ноги насекомых и эмбрионы цыплят Внимание должно быть обращено к: (1) При удержании слайда его следует оставаться плоским или помещать на платформу. При капающей воде количество воды должно быть уместным, чтобы быть просто покрытым покрытием стаканом. (2) Материалы должны быть развернуты на одной плоскости без перекрытия с рассеиванием иглы или щипцов. (3) При размещении крышки стакана медленно накройте его на каплю воды с одной стороны, чтобы предотвратить пузырьки. (4) При окрашивании положите каплю окрашивающей жидкости на одну сторону крышки стекла и сосут ее с другой стороны с помощью абсорбирующей бумаги, чтобы образец под крышкой стекло равномерно окрашен. После окраски используйте тот же метод, выпадайте каплю воды, высасывайте окрашивание и наблюдайте за ним под микроскопом.

1. Различные компоненты Электронный микроскоп имеет три части, а именно: ствол для линз, вакуумное устройство и силовой шкаф. Оптический микроскоп в основном состоит из четырех частей, а именно, объективной линзы, окуляра, отражателя и конденсатора. 2. Принцип визуализации отличается. Электронный микроскоп использует электронный луч для проникновения в образец, а затем увеличивает изображение объективом. Оптический микроскоп в основном использует принцип увеличения визуализации выпуклой линзы для увеличения образца. 3. Источник освещения отличается. Источником освещения, используемом электронным микроскопом, является электронный поток, излучаемый электронным пистолетом; Источником освещения оптического микроскопа является видимый свет (солнечный свет или свет). Поскольку длина волны электронного потока намного короче длины волны световой волны, увеличение и разрешение электронного микроскопа значительно выше, чем у светового микроскопа. 4. Линзы разные. Объективная линза для увеличения в электронном микроскопе представляет собой электромагнитную линзу (электромагнитная катушка в форме кольца, которая может генерировать магнитное поле в центральной части); Объективная линза оптического микроскопа представляет собой оптическую линзу из стекла. В электронном микроскопе есть три группы электромагнитных линз, которые эквивалентны объективе конденсатора, объективной линзы и объектива окуляра в оптической линзе. 5. Разное использование Из -за своего высокого разрешения электронный микроскоп может быть использован для наблюдения за тонкой структурой материала, которую нельзя различать обычным микроскопом, а также можно использовать для анализа состава материала. Оптический микроскоп в основном используется для наблюдения за микроскопическими материалами в биологии и медицине, а также в качестве экспериментального инструмента для учащихся в обучении.