ニュース

組織サンプリングは、スライスを作成するための重要な手順の1つです。教育、科学研究、および外部検査の特定の要件によれば、組織は人間または動物から採取され、サンプリングの場所と方法が決定されます。特定の要件は次のとおりです。 1.元の形態構造を確保するための新鮮な材料2.組織ブロックのサイズ組織ブロックの理想的な体積は2.0x2.0x0.3cmであるため、固定液は組織に迅速かつ均等に浸透することができます3.組織ブロックを絞らないでください。組織ブロックの刃はシャープでなければなりません。押出による組織や細胞の変形を避けるために、組織を強く固定しないでください。 4.サンプリング位置を標準化します。サンプリングは、解剖学的位置に従って正確であり、要件に応じて標準化されます。 5.組織ブロックのセクションを選択すると、各組織の構造に従ってセクションの方向が決まります。多くの場合、縦方向および横断面が組織の形態学的構造を表示するための鍵です。 6.素材を清潔に保ちます。組織ブロックに汚れ、粘液などがある場合、固定溶液に入れる前に水で洗浄することができます。 7.組織の元の形状を保持します。新鮮な組織を固定した後、ほとんどの組織は収縮し、時には完全に変形します。したがって、プロトタイプを可能な限り維持するために組織を平らにします。

私たちの日常生活では、私たちはあらゆる種類の植物、特に松、モミ、サイプレス、イチョウ、あらゆる種類の開花植物や結実植物などの種子植物にさらされています。植物の分類を体系的に研究するために、植物標本を使用できます。植物標本は、使用の目的に従って次のカテゴリに分けることができます（1）系統発生標本：準備の目的は、植物の生活史を観察し、研究することです。つまり、種子の発芽から成長、発達、開花、結実への各段階での植物の成長です。これは、生物学的教育、紹介、栽培、科学的研究で一般的に使用されています。 （2）標本全体：通常、植物、科学名、中国の漢方薬を識別するために使用されます。この標本は、地域の植生調査にも使用されます。たとえば、学校や山の植物資源を調査してください。高等植物の根、茎、葉、その他の栄養器官は、植物を識別するための塩基の1つですが、成長環境が異なるため、しばしば異なります。花と果物には比較的安定した遺伝があり、植物の固有の特性を最もよく反映することができ、植物を特定して特定するための重要な基礎です。標本を収集するときは、完全な根、茎、葉、花、果物を持つ標本を収集してみてください。ハーブも地下に掘られるべきです。胞子嚢、根茎、鱗、およびindumentumの形状と配置は、シダの重要な分類学的特性であり、収集する際に注意を払う必要があります。標本全体は、しばしばワックス葉標本と一次色の浸漬標本に作られています。 （3）解剖学的標本：準備の目的は、植物器官の内部組織構造を観察し、研究することです。たとえば、タマネギの球根を分析して、ベースプレート、芽、スケール葉、繊維状の根などの構造を観察します。横膜の胎盤と種子の軸受位置は、横断分離によって観察されました。桃の花は、そのさまざまな部分と形態を観察するために縦方向に解剖されました。この種の標本を収集するには、枝全体を収集する代わりに、健康で代表的な臓器を選択するだけです。解剖学的標本は通常、防腐剤の含浸標本になります。 （4）比較標本：比較試験片は、主に異なる植物の臓器の類似性と相違点を比較するために使用されます。たとえば、双子葉類と単眼板の種子形態を比較するには、レイプ、大豆、キュウリ、トマトなどの成熟した果物を集め、皮を除去し、種子を乾燥させ、小麦の果物を集める必要があります。 、および比較のためのトウモロコシ。比較標本は、ワックス葉の標本または空気乾燥標本にすることができ、一次色に浸した果物の方が良いです。

顕微鏡の適切な維持は、顕微鏡のサービス寿命を延長する可能性があります。今日は、光学ガラスをきれいにする方法を説明します。ガラス表面クリーニングには、原子レベルの洗浄表面とプロセステクノロジークリーニング表面の2種類があります。アトミックレベルの洗浄は、超真空条件下で実施する必要があるため、特別な科学用途に必要です。一般に、製品処理の要件を満たすには、プロセステクノロジーのきれいな表面のみが必要です。光学ガラスは、楽器のレンズ、プリズム、レンズなどに使用されます。製造と使用では、脂っこい汚れ、湿った汚れ、指紋などを簡単に入手でき、イメージングや光透過率に影響します。光学ガラスをきれいにするには、汚れの特性と構造に従って、さまざまな洗浄剤、ツール、および方法を選択する必要があります。カメラ、スライドプロジェクター、顕微鏡レンズなどのアンチストレクトフィルムでコーティングされたレンズをきれいにし、洗浄剤として約20％のアルコールと80％のエーテルを使用します。掃除するときは、少量の洗浄剤で浸した柔らかいブラシまたはコットンボールを使用して、レンズの中心から外側に円形の動きをします。洗浄のために洗浄剤にそのようなレンズを浸さないでください。洗浄時に激しく拭き取らないでください。そうしないと、反射膜が損傷し、レンズが損傷します。ガラス表面をきれいにする方法はたくさんあり、そのうちの1つは、ガラス表面の元の汚染度、その後のガラス表面処理プロセス、および最終製品の目的に従って選択または組み合わせることができます。オイルミスト、水湿った霧、光学ガラスの油水混合ミストも、洗浄剤を使用してきれいにすることができ、洗浄方法はレンズのものと似ています。光学ガラスの表面のカビは、一般的な現象です。光学ガラスがカビの生じた場合、光が表面に散らばり、画像がぼやけ、深刻な場合には機器が廃棄されます。光学ガラスのカビの理由は、その表面に微生物胞子があるからです。温度と湿度が適切で、「栄養素」が必要な場合、急速に成長し、カビのスポットを形成します。光学ガラスアンチカビとアンチフォーリングを作成することが特に重要です。カビが発生したら、すぐに掃除する必要があります。乾燥に注意してください。

植物浸漬標本は、植物の元の色と形状を観察できるように、化学物質が調製した溶液に新鮮な植物材料を保管することです。植物浸漬標本には、良い保存効果と長い保存時間があり、植物の元の明るい色を回復します。それには多くの利点があり、植物の研究に不可欠な科学的基盤を提供します。浸漬標本はどのように植物の元の色を維持していますか？植物が緑である理由は、植物の葉緑体にクロロフィルが含まれているためです。クロロフィルは複雑な有機化合物です。その分子構造の中心に金属マグネシウム原子があります。クロロフィルが緑である理由は、マグネシウム原子のコア構造が含まれているためです。植物に元の緑を保持したい場合は、クロロフィルのマグネシウムイオンを銅イオンに置き換える必要があります。その方法は、酸を使用してマグネシウムをクロロフィル分子から分離することです。この時点で、クロロフィルにはマグネシウムがないため、植物は茶色になります。次に、クロロフィル分子のコアマグネシウムを銅に置き換えます。コアとして銅原子を含むクロロフィル分子の構造は非常に安定しており、分解して破壊するのは簡単ではなく、アルコールやホルマリンに溶けません。したがって、この方法で処理された植物サンプルは、保存ソリューションで長い間グリーンを保存できます。

プレス標本としても知られるワックスリーフ標本は、最も一般的な種類の植物標本です。植物種を正しく識別して、植物の自然で真の形態学的特性を維持できる標本を作ることが重要です。ワックスリーフ標本の利点は、長い間保存できることです。世界で長い歴史を持つワックス葉の標本のコレクションは、16世紀頃にさかのぼることさえできます。しかし、この伝統的な方法によって作られたワックス葉標本は、植物中のクロロフィルとアントシアニンの破壊のために薄れています。さらに、ワックスリーフ標本はプレスプロセスを使用しているため、最終製品は茶色の黄色にフェードされ、表紙に固定された平らな状態を示します。これは、美的観点からは支配的ではありません。抑制プロセスは、植物の元の生態学的特性と芸術的美しさを組み合わせる鍵です。標本を収集した後、現場でのプレス効果は最適ですが、実際の操作は時間がかかり、労働集約的であり、これは困難です。したがって、植物はセルフシーリングビニール袋に入れることができます。押出の変形を防ぐために、ベルトを膨らませ、対応する収集情報をマークし、シーリング後に押すために戻す必要があります。薄くて水の損失に対して脆弱な植物の場合、植物の特性を正確に説明するために現場で抑制する必要があります。植物を標本フォルダーに配置するときは、根、枝、葉、花、果物を広げ、それらを部分的に回して、標本の特性をよりよく理解してください。

生物学的標本の使用は多様であり、科学的研究と生物学的教育において重要な役割を果たしています。さらに、絵、展示、視聴などにも大きな価値があります。 科学的研究のために、生物学的標本は、科学研究のための直接的で信頼性が高く、正確で直感的なオブジェクトとデータを提供できます。これは、動物や植物の生命、成長、開発法則を研究するために非常に重要です。たとえば、植物の分類学者がさまざまな植物を体系的に分類する場合、植物標本を主な基礎として、植物の基準を通じて根、茎、葉、花、果物、種子、その他の側面の研究オブジェクトの違いを正しく分析する必要があります。各植物を正確に識別するために、その特性を判断します。 教育において、生物学的標本は、教師によって説明された知識をより直感的に表示し、生徒の理解と認知を深めることができます。たとえば、動物や植物博物館を訪れるとき、多くの貴重な動物や植物の標本を見ることができます。これらの生物学的標本の展示は、若者の大半に生物学的知識を学ぶ条件を提供し、学習への関心を改善し、自然の一般の理解を高め、動物と植物の保護の正しい概念を確立します。 生物学的標本は、人間の自然遺産における最も価値のある恒久的な記録であり、科学研究、科学的知識の普及、人間の日常生活においてかけがえのない役割を果たします。時代の発展に伴い、人間は天然資源の使用に移行し、環境は今日徐々に悪化しています。標本の形で生物種を保存することは、生物学的発達と進化の過程に関する将来の研究にとっても非常に重要です。

実験クラスでは、すべての生物学的スライドを使用しており、生物学的スライドがより良い研究と研究に役立つことがわかっていますが、生物学的スライドを作成するプロセスには必然的にいくつかの問題があります。次に、生物学的スライドを作成する過程でどのような問題が発生するかを理解しましょう。 1.脱水、透明性、長すぎるワックスの時間、温度が高すぎると組織の脆性が生じる可能性があります。さらに、組織自体のテクスチャーは、組織の脆性を引き起こす可能性もあります。ワックススライスに空気を吹きながら切断しようとすることができます。 2.ナイフは鋭くなく、ナイフの角度が大きすぎ、ガラスのスライドが厚すぎるため、ガラスのスライドが巻き上げられる可能性があります。 3.ブレードが不均一である場合、スライドナイフはまっすぐではなく、スライドナイフがワックスブロックと平行ではない場合、ワックスが曲がっている可能性があります。 4.ナイフがナイフベースとワックスブロックで固定されていない場合、組織が硬すぎる場合、スライドマシンのスピンドルが前方になりすぎる場合、またはスライドマシンが摩耗している場合、厚さは不均一になります。 5.ガラススライドの亀裂は、ナイフの隙間、パラフィンの不純物、組織内の骨の断片、または綿紙繊維の有線結び目によって引き起こされる場合があります。 6.組織の脱水不良は、ガラスのスライドが接続されていない、切断できない、ガラスのスライドが非常に厚く、ガラスのスライドの後ろのワックスブロックが白く、侵入などであるという現象につながる可能性があります。実際の操作にはまだ多くの問題があります。この側面に興味がある場合は、詳細についてはフォローできます。

良い凍結セクションを作成するには、セクションの品質を確保し、同時に手術中の迅速な病理学的診断の精度を向上させるために、凍結セクションマシンの理解と選択と大きな関係があります。凍結スライサーは、スライス装置と冷蔵システムで構成されています。一般に、完全な凍結スライスシステムは、ホストマシン（フリーザーボックス、サンプルヘッド、クイックフリーズテーブルなど）、ツールホルダー、ブレードで構成されています。冷凍スライサーの動作を標準化する方法は？みてみましょう1.最初に、機器がしっかりと安定して配置されているかどうか、電源プラグとソケットの間の接続が信頼できるかどうか、および接地が良好かどうかを確認します。換気と熱散逸を容易にするために、特定のギャップが残り、電圧が正常かどうか。 2.電源のメインスイッチをオンにし、冷凍庫の温度、コールドテーブルの温度、サンプルヘッドの温度、スライスの厚さを確認/設定し、通常のインターフェイス（通常、このマシンを入力しますコールドテーブルの冷蔵が職場で開始され、職場でオフになっている限り、24時間電源を入れ、通常のスタートアップ状態にあります。 3.スライス手順：サンプルヘッドに埋め込み剤を備えた「サンプリングされた」試験片を置き、「クイックフリーズ」のためにクイックフリーズテーブルに置き、「スライシングハンドホイール」をロックします。しばらくして、凍結した標本をサンプルクランプで固定し、最初に標本を修理し、次にスライスしてパッチします。 4.パッチを「酢酸アルコール溶液」に浸して「修正」します。 5.カットサンプルには、スタンバイ用に番号が付けられ、保存されるか、ダウンストリームプロセスで使用されます。 6.シャットダウン手順 - ハンドホイールをロックし、冷凍庫をきれいにし、冷凍庫のドアを開き、電源スイッチを切り取ります。このマシンは連続作業機であり、継続的に電源を入れています。一般的に、シャットダウンしません。短時間使用されていない場合は、コールドテーブルの冷蔵をオフにし、冷凍庫の温度を0を超えて停止します。

（1）材料の品質は、スライスの品質に直接影響します。材料を摂取するとき、医師は、材料ナイフを前後にドラッグしないように、鋭い材料ナイフを早めに持っている必要があります。また、材料を摂取するときに可能な限り繊維と並行して切断することをお勧めします。 （2）固定は、技術室の仕事の一部であり、生産プロセス全体の取り付け不可能な部分でもあります。固定は、組織細胞が自己分解や腐敗を防ぎ、細胞内の酵素によるタンパク質の分解を防ぎ、元の構造を生命と同様に保つためです（3）固定後の水洗浄は通常、多くの人々によって無視され、不完全な洗浄は、支持プレートと染色の色が劣るのは簡単です。 （4）脱水は、脱水機を使用して組織内の水を置き換えることであり、これは有機溶媒の浸透を助長します。脱水が完全であるかどうかは、組織が完全に透明である可能性があり、過度の脱水が脆性組織を引き起こすことができるかどうかに直接関係しています。 （5）スライスをよくカットしたい場合は、以前に鋭いスライスナイフを使用する必要があります。粉砕ナイフは、スライス技術者にとって比較的基本的な技術です。ナイフ研削の品質は、スライスの品質に直接関係しています。 （6）染色時間は、古い燃料と新しい燃料、温度、およびチップの種類に従って決定するものとする。チップは、温水または水道水で溶けて完全に洗浄することができ、塩酸残基によって引き起こされるフェージングを防ぐことができます。 （7）カバーシートのガムは薄すぎてはなりません。シートを密封する場合、ガムはカバーシートで均等に満たされ、ガムはオーバーフローしてはなりません。組織は、泡なしで完全に覆われ、標識されなければなりません。ラベルは、スライドの左側または右側に貼り付ける必要があります。番号は明確に書かれた後にのみ印刷できます

小さな生物学的スライスを通して、生物学的特性を理解できます。生物学的教育スライスは、生物学的教育において重要な価値を持ち、直感的な教育ツールとして役割を果たします。パラフィンセクションは永久セクションとも呼ばれます。これは、主にさまざまな植物組織のセクションに適しています。セクションの厚さは簡単に制御でき、明確さは良好であり、連続セクションにすることができます。パラフィンスライスのメーカーは、植物のパラフィンスライスを保存する方法を説明します。観測材料を特定の固定液にできるだけ早く入れ、細胞を迅速に殺し、自然な生活状態に保つようにします。材料が固定されたら、使用するために保存する必要があります。このプロセスでは、材料の構造が変更されないように必要です。一般的に使用される保存溶媒は70％のアルコール溶液であり、これにより、通常の材料が長い間悪くなるのを防ぐことができます。また、冷蔵庫に保管する必要があります。アルコール濃度の使用：50％などの低濃度アルコールで弱い植物と柔らかい植物を修正します。 70％のアルコールを使用して、古い材料または硬い材料を修正します。植物胚材料が固定されている場合、フォーミュラは50％アルコール89ml+氷河酢酸5ml+ホルムアルデヒド40％に貯蔵のために変更できます。生物学的組織スライスの4つの辺は収縮や変形なしに固定されており、両側のプレキシガラスの滑らかな表面は、生体組織の内部構造を観察するのに便利な固定スライスの両側を保護します。

蛍光顕微鏡は、免疫蛍光細胞化学の基本的なツールです。光源、フィルタープレートシステム、光学システム、その他の主要なコンポーネントで構成されています。通常の光学顕微鏡で観察します。スライド標本は通常、ヘマトキシリンエオシンで染色され、時には特別な染色で染色されます。まず第一に、光学顕微鏡は、アーティファクト、変形、歪みを避けるために、生物学的材料の自然な状態を可能な限り維持する必要があるため、生物学的材料を固定する必要があります。光学顕微鏡の下で画像化する前に、フィルムは薄くて透明でなければなりません。材料を薄いスライスに切断したり、光を押したりしたり、他の手段で分散させたりすることに加えて、構造の詳細をよりよく観察するために、透明で染色するために他の方法を使用する必要があります。実際、すべての生物学的材料は、パラフィンの埋め込み、スライス（または塗抹）、接着、ワックス溶解、透明性、その他のプロセスを介して、厚さと透明性の要件を満たす標本を取得し、染色手順を通じて一定のコントラストを得ることができます。生物学的スライスは、26x76mmの標準サイズと1.1 ^ -1.3mmの厚さのガラススライドに貼り付けられていることがよくあります。ガラススライドの両側は平行平面でなければなりません。ガラススライドの厚さの要件はそれほど厳格ではありませんが、その厚さが補正度の高いコレクターの自由作動距離を超えると、ガラススライドの厚さが光源に焦点を合わせて、オブジェクトプレーンでフィールドストップ。この場合、0.9 ^ -1.0mmの厚さのガラススライドが適切です。

蛍光顕微鏡は、高発光効率の高い点光源であり、特定の波長（紫外線光3650やバイオレットブルーライト4200など）の光をフィルターカラーシステムを介した励起光として放出します。励起後、標本の蛍光物質はさまざまな色の蛍光を放出し、客観的なレンズとアイピースの増幅を通して観察します。このように、強いコントラストの背景の下では、蛍光でさえ非常に弱く、認識が容易であり、感度が高くなります。主に細胞構造と機能と化学組成の研究に使用されます蛍光顕微鏡の光源は、直接照明としてではなく、標本内の蛍光物質を刺激するためのエネルギー源として機能します。標本を観察できる理由は、光源の照明ではなく、励起光エネルギーの吸収後に標本に蛍光物質によって提示される蛍光現象です。蛍光顕微鏡の主な特徴は、その光源が特定の波長範囲で大量の励起光を供給し、試験片の蛍光物質が必要な励起光の強度を得ることができることがあることがわかります。同時に、蛍光顕微鏡には対応するフィルターシステムが必要です。 蛍光顕微鏡は、蛍光顕微鏡検出のための特別なツールであり、一種の光学顕微鏡です。光学顕微鏡の基本構造と光増幅に加えて、蛍光特性に基づいた次の独自の機能要件もあります。 （1）蛍光を励起するのに十分なエネルギーを提供する光源。 （2）異なる物質に必要な励起スペクトルに適応するカラーフィルターのセットでは、光源から適切な励起スペクトルが選択され、そのため、沈殿したスペクトルが物質の吸収スペクトルと一致するように、最大蛍光。 （ 3） ）弱い蛍光画像を取得するには、カットオフカラーフィルターのセットも確立する必要があります。これにより、必要な観測された蛍光がイメージングのためにシステムに入り、放出された光波を含む残りの光波が光は、画像の裏地を改善するためにブロックされています。 （ 4 ）増幅された光学システムは、蛍光の特性に適応し、最終的に観察および写真を撮ることができる高輝度と高解像度の良好な蛍光画像を取得する必要があります。 （5）機器の安全。電気器具の安全性を確保するために、紫外線と水銀ランプの爆発の漏れを防ぐために、水銀ランプの適用が必要です。

ジャンパー、ノミ、プランソッパーなどの小さな昆虫の場合、針を直接挿入すべきではありませんが、特別な方法を使用する必要があります。 1 。二重補間 針のサイズ00は薄くて短く、鋭い先端があり、針キャップがありません。それは、小さな硬い昆虫に穴を開けるために特別に使用されています。昆虫の体を小さな鉗子で拾い上げ、標本を通常の針の位置に応じてマイクロニードルで垂直に穴を開け、小さな三角形のコルクブロックまたはハードペーパーに挿入しました。次に、1番の上の昆虫の針を三角紙の下端の近くに挿入し、昆虫の位置を3段階の段階で固定しました。挿入された標本とラベルは、昆虫の針の左側にありました。 2.ワーム補間段ボールを、ボトムエッジの長さが0.4cm、高さは1cmの小さなイソシェルの三角形カードに切ります。昆虫の針の先端をラテックスに浸し、三角形のカードの先端にそっと指します。次に、針の先端で昆虫の体を接着し、ラテックスに置き、針をすばやく引き出して昆虫の体を拾わないようにします。この操作の重要なポイントは、針の先端にあまり多くのラテックスがあるべきではないということです。接着された標本を直立させる必要がある場合、昆虫の先端を使用してそれをかき混ぜることができます。最後に、昆虫の針を三角形フィルムの下端の近くに挿入でき、昆虫の位置は3段階のステージで固定でき、ラベルを長期保管のために試料ボックスに挿入できます。

生物学に関する人々の研究により、実験構造を観察するために、実験的な観察のためにますます多くの実験的な記事をスライスする必要があります。したがって、さまざまな生物薬物実験切断機が出現しました。スライスメカニズムの出現は、人々がさまざまな実験サンプルを処理するのに役立ちました。実験構造の観察を促進するために、人々はテストサンプルを前処理するだけでなく、厚さを正確にスライスする必要があります。スライス方法は、鋭利な切削工具を使用して、組織を非常に薄いスライスにカットすることです。この材料は、固定、脱水、埋め込み、スライス、染色など、一連の特別な治療を受ける必要があります。プロセスは非常に複雑です。生産プロセスでは、さまざまな材料の特性要件に従って合理的に選択できる一連の物理的および化学的処理を受ける必要もあります。セクションのプロセスは面倒でテクノロジーが複雑ですが、細胞間の正常な関係を維持し、細胞の元の外観をより良く、より長い時間維持するのが最適であるため、光学顕微鏡を作る主な方法です。既存のスライサーは通常、手動スライスを使用します。スライスの安定性と精度は低く、スライスの厚さは一貫していません。これは、操作が容易で、使用が柔軟で、スライスの安定性と精度を改善するのに便利な生物学的スライサーデバイスです。現在、一般的に使用される生物学的組織スライサー、パラフィンスライサー、冷凍スライサーなどがあります。生物学的組織スライサーは、その高精度と安定性で有名です。ステッピングモーターによって供給され、サンプルの格納とスライスカウントの機能があり、サンプルヘッドのx / y軸に正確に配置されています。スライサーの動作原理は比較的単純です。つまり、スライサーの鋭い切断面を使用することにより、オブジェクトと材料は、ポイントの割合または幅に応じて断片に切ります。生産、医薬品、またはその他の用途に適しています。生物学的スライサーの主な目的は、次のプロセスを促進するために、薬剤、細胞組織、ワックスなどの材料をスライスすることです。

1.ピン挿入固定一般的に、毒殺後の新鮮な標本が収集されます。標本が乾燥していて硬い場合は、針を固定するために針を挿入する前に、柔軟剤に1〜2日間置く必要があります。柔軟剤から昆虫をピンセットで慎重に取り出し、姿勢段階全体に置き、できるだけ手で触れることを避けます。昆虫の体のサイズに応じて対応する昆虫の針を選択し、昆虫の背中の正中線のわずかに右から昆虫の針を挿入し、腹部からそれを渡し、一般的に針を中央の中央に作ります2フィート。 2.自分の翼を広げて姿勢をまっすぐにする蝶、トンボ、その他の昆虫は翼を広げる必要があります。翼を広げるときは、最初に針を広げプレートに針を慎重に挿入し、昆虫の体が溝に落ち、翼と広がりプレートが水平になるようにします。次に、翼を鉗子で展開して、体に垂直な前面の翼の後縁を作ります。翼が理想的な位置に調整されたら、翼を片手で翼を押し、もう片方の手にストリップ紙の周りにピンを挿入しますが、翼には挿入されないように、ストリップ紙と翼の延長プレートが翼を固定するために密接に組み合わせることができます。翼を広げた後、アンテナ、足、腹部の位置を調整すると、完了します。 3.乾燥と保管標本が上記のアクションを完了した後、ほぼ終了します。残りは標本を乾燥させることです。一般に、50°Cの一定温度ボックスで約1週間乾燥させることができます。乾燥ボックスがない場合は、乾燥のために屋内換気のある場所に置くこともできます。乾燥後、標本は標本ボックスに保管できます。標本ボックスは、換気された乾燥した場所に保管する必要があります。各標本は、大事にして利用されるべき生命を表しています。たとえば、その形状を注意深く観察し、他の科学的研究を分類して実施してみてください。

パラフィンセクションは、従来の組織学的手法で最も広く使用されている方法です。正常な細胞と組織の形態学的構造を観察するためだけでなく、病理学、法医学、その他の分野で使用される主な方法も、細胞および組織の形態学的変化を研究、観察し、判断するために使用され、で広く使用されています。他の多くの分野や分野。パラフィンのセクション方法には、材料の抽出、固定、洗浄、脱水、透明性、ワックス浸漬、埋め込み、セクションと貼り付け、脱線、染色、脱水、透明性、シーリングの手順が含まれます。通常、パラフィンセクションは、HE染色またはIHCに使用されます。厚さは薄く、一般に4umで、プロセスはより複雑で、サンプルの品質は異なる組織の種類と組成に依存し、これはメーカーの経験により依存します。最良の実験条件を取得するには、実験プロセスで常に最適化する必要があります。

通常の生物学的顕微鏡の拡大は、1000〜1600回に達する可能性があります。一般に、菌類や酵母などの微生物は比較的大きく、低電力の対物レンズと高出力の対物レンズで良好な結果を得ることができます。しかし、染色された細菌の形態と真核細胞の形態学的構造を見るために、油レンズを使用することが最善です。オイルレンズは、顕微鏡の一種の客観的なレンズです。フルネームは、オイルステンドの対物レンズです。顕微鏡の対物レンズの媒体には、空気、水、油が含まれます。後者の2つは、高解像度の対物レンズに使用されます。オイルミラーの正しい使用をマスターします1.オイルレンズを使用する場合は、最初にガラススライドにアスファルトを落として、オイルレンズに入る光を増加させ、視野の明るさを高め、オブジェクト画像をより明確にします。 2.顕微鏡をテーブルに直立させ、アスファルトの流出を避けて観測に影響を与え、テーブルに汚染するように、鏡の腕を曲げてステージを傾けないようにします。 3.照準自然光が光源として使用される場合、平面反射器を使用する必要があります。人工光を使用する場合、凹面鏡を使用するものとします。まず、開口部を開き、反射器を回転させて、光コレクターに光を集中させます。ライトコレクターを上下に移動し、必要に応じて開口部をスケーリングして、最高の明るさを得ることができます。 4.フォーカス調整： stape標本をステージに置き、標本プッシャーで固定し、目的レンズの下で調べる部品を移動します。まず、低出力レンズで標本の位置を見つけてから、レンズバレルを上げ、テストする試験片にレンズオイルをドロップしてから、観察のためにオイルレンズを交換します。 cor粗アジャスターを回して、オイルレンズがオイルに浸されるまでゆっくりとステージを上げます（またはレンズバレルを徐々に下げます）。この時点で、標本を押しつぶしてレンズに損傷を与えないように、目を側面から観察する必要があります。次に、両目を接眼レンズに移動し、接眼レンズから観察し、粗いアジャスターをゆっくりと回転させます（ステージを下げたり、レンズバレルを上げます）。ぼやけたオブジェクト画像がある場合は、細かいアジャスターに変更し、オブジェクト画像がクリアになるまで回転します。 bidervation観察後、レンズバレルを最初に飼育する必要があり、標本を降ろす前にオイルレンズを片側にねじる必要があります。オイルレンズを使用した後、レンズのオイルをレンズの拭き取り紙ですぐに拭き取ります。レンズオイルがレンズ上で乾燥している場合、レンズをレンズをレンズ拭き取り紙に浸した少量のキシレンで拭くことができ、その後、キシレンが浸透してガムを溶解するのを防ぐために、乾燥レンズ紙で残留キシレンを拭き取ります。レンズを固定するために使用され、レンズがシフトまたは落ちます。

永続的なスライド標本を保持し、永久に使用できます。積分荷重方法：これは、スライド標本を作るために、小さな生物全体または臓器の一部を密封する方法です。この方法は、一般に、単細胞藻類、糸状藻類、菌類、軟体植物、プロトプラスト、シダ、高植物の表皮、花柄と花粉穀物、原生動物、翼の表皮など、小さな体または薄い体の生物または臓器に適用できます。アンテナ、昆虫の足、ひよこ胚注意が払われなければならない： （1）スライドを保持するときは、平らに保つか、プラットフォームに配置する必要があります。水を滴下するときは、カバーガラスで覆うように、水の量が適切である必要があります。 （2）材料は、針または鉗子を解剖することと重複することなく、同じ平面上で展開するものとする。 （3）カバーグラスを置くときは、泡を防ぐために片側からゆっくりと覆います。 （4）染色するときは、カバーガラスの片側に染色液を一滴入れ、反対側から吸収性紙で吸い込んで、カバーガラスの下に標本を均一に色付けします。着色後、同じ方法を使用し、水滴を落とし、染色溶液を吸い取り、顕微鏡下で観察します。

1.異なるコンポーネント電子顕微鏡には、レンズバレル、真空デバイス、電力キャビネットの3つの部分があります。光学顕微鏡は、主に4つの部分、すなわち客観的なレンズ、アイピース、リフレクター、コンデンサーで構成されています。 2.イメージングの原則は異なります。電子顕微鏡は電子ビームを使用してサンプルに浸透し、レンズによって画像を拡大します。光学顕微鏡は、主に凸レンズの拡大イメージング原理を使用してサンプルを拡大します。 3.照明源は異なります。電子顕微鏡で使用される照明源は、電子ガンによって放出される電子流です。光学顕微鏡の照明源は可視光（日光または光）です。電子流の波長は光波の波長よりもはるかに短いため、電子顕微鏡の倍率と解像度は光顕微鏡の波の波長よりも著しく高くなっています。 4.レンズは異なります。電子顕微鏡で拡大するための対物レンズは、電磁レンズ（中央部で磁場を生成できるリング型電磁コイル）です。光学顕微鏡の対物レンズは、ガラスで作られた光学レンズです。電子顕微鏡には電磁レンズの3つのグループがあります。これは、光レンズにはコンデンサーレンズ、目的レンズ、アイピースレンズに相当します。 5.さまざまな用途高解像度のため、電子顕微鏡を使用して、通常の顕微鏡で区別できない微細な材料構造を観察することができ、材料組成の分析にも役立つために使用できます。光学顕微鏡は、主に生物学および医学における顕微鏡材料の観察に、また教育における学生のための実験ツールとして使用されます。