Berita

Pengambilan sampel jaringan adalah salah satu prosedur penting untuk membuat irisan. Menurut persyaratan spesifik pengajaran, penelitian ilmiah dan inspeksi eksternal, jaringan diambil dari manusia atau hewan, dan lokasi dan metode pengambilan sampel ditentukan. Persyaratan khusus adalah sebagai berikut: 1. Bahan segar untuk memastikan struktur morfologis asli 2. Ukuran jaringan blok volume ideal blok jaringan adalah 2.0x2.0x0.3cm, sehingga fiksatif dapat dengan cepat dan merata menembus jaringan 3. Jangan memeras blok jaringan. Bilah blok jaringan harus tajam. Jangan menjepit jaringan terlalu erat untuk menghindari deformasi jaringan dan sel karena ekstrusi. 4. Standarisasi posisi pengambilan sampel. Pengambilan sampel harus akurat sesuai dengan posisi anatomi, dan distandarisasi sesuai dengan persyaratan. 5. Memilih bagian blok jaringan menentukan arah bagiannya sesuai dengan struktur masing -masing jaringan. Bagian longitudinal dan melintang sering kali merupakan kunci untuk menampilkan struktur morfologis jaringan. 6. Menjaga bahannya tetap bersih. Jika ada kotoran, lendir, dll. Di blok jaringan, itu dapat dibersihkan dengan air sebelum dimasukkan ke dalam larutan pemasangan. 7. Simpan bentuk asli jaringan. Setelah memperbaiki jaringan segar, sebagian besar jaringan akan menyusut, kadang -kadang bahkan benar -benar berubah bentuk. Oleh karena itu, ratakan jaringan untuk mempertahankan prototipe sebanyak mungkin.

Dalam kehidupan kita sehari -hari, kita terpapar semua jenis tanaman, terutama tanaman benih, termasuk pinus, cemara, cemara, ginkgo, dan semua jenis tanaman berbunga dan berbuah. Untuk mempelajari klasifikasi tanaman secara sistematis, kita dapat menggunakan spesimen tanaman. Spesimen tanaman dapat dibagi menjadi kategori berikut sesuai dengan tujuan penggunaan (1) Spesimen filogenetik: Tujuan persiapan adalah untuk mengamati dan mempelajari sejarah kehidupan tanaman, yaitu pertumbuhan tanaman pada setiap tahap dari perkecambahan biji hingga pertumbuhan, perkembangan, berbunga dan berbuah. Ini umumnya digunakan dalam pengajaran biologis, pengenalan, budidaya dan penelitian ilmiah. (2) seluruh spesimen: biasanya digunakan untuk mengidentifikasi tanaman, nama ilmiah dan obat -obatan herbal Cina. Spesimen ini juga digunakan untuk survei vegetasi di suatu daerah. Misalnya, selidiki sumber daya tanaman sekolah atau gunung. Akar, batang, daun dan organ vegetatif tanaman tinggi lainnya adalah salah satu basis untuk mengidentifikasi tanaman, tetapi seringkali berbeda karena lingkungan pertumbuhan yang berbeda. Bunga dan buah -buahan memiliki keturunan yang relatif stabil, yang dapat mencerminkan karakteristik tanaman yang melekat, dan merupakan dasar penting untuk mengidentifikasi dan mengidentifikasi tanaman. Saat mengumpulkan spesimen, cobalah untuk mengumpulkan spesimen dengan akar lengkap, batang, daun, bunga dan buah -buahan. Herbal juga harus digali di bawah tanah. Bentuk dan pengaturan sporangia, rimpang, timbangan dan indumentum adalah karakteristik taksonomi yang penting dari pakis, yang harus diperhatikan saat mengumpulkan. Seluruh spesimen sering dibuat menjadi spesimen daun lilin dan spesimen perendaman warna primer. (3) Spesimen Anatomi: Tujuan persiapan adalah untuk mengamati dan mempelajari struktur organisasi internal organ tanaman. Sebagai contoh, membedah bohlam bawang untuk mengamati struktur pelat dasar, tunas, daun skala, akar berserat, dll. Plassen membran lateral dan posisi bantalan biji mentimun diamati dengan diseksi transversal; Bunga persik dibedah secara longitudinal untuk mengamati berbagai bagian dan morfologinya. Untuk mengumpulkan spesimen semacam ini, Anda hanya perlu memilih organ yang sehat dan representatif, alih -alih mengumpulkan seluruh cabang. Spesimen anatomi biasanya dibuat menjadi spesimen yang diresapi antiseptik. (4) Spesimen Perbandingan: Spesimen perbandingan terutama digunakan untuk membandingkan persamaan dan perbedaan organ tanaman yang berbeda. Misalnya, untuk membandingkan morfologi biji dikotil dan monokotil, perlu untuk mengumpulkan buah -buahan matang dari pemerkosaan, kedelai, mentimun, tomat, dll. , dan jagung untuk perbandingan. Spesimen perbandingan dapat dibuat menjadi spesimen daun lilin atau spesimen kering udara, dan buah yang direndam dengan warna primer lebih baik.

Pemeliharaan mikroskop yang tepat dapat memperpanjang umur layanan mikroskop. Hari ini, saya akan menjelaskan cara membersihkan kaca optik. Ada dua jenis pembersihan permukaan kaca: permukaan pembersihan tingkat atom dan permukaan pembersihan teknologi proses. Pembersihan tingkat atom diperlukan untuk aplikasi ilmiah khusus karena perlu dilakukan dalam kondisi vakum ultra. Secara umum, hanya permukaan bersih dalam teknologi proses yang diperlukan untuk memenuhi persyaratan untuk pemrosesan produk. Kaca optik digunakan untuk lensa, prisma, lensa, dll. Instrumen. Dalam pembuatan dan penggunaan, mudah untuk mendapatkan kotoran berminyak, kotoran basah air, sidik jari, dll., Yang mempengaruhi pencitraan dan transmitansi cahaya. Untuk membersihkan kaca optik, agen pembersih yang berbeda, alat dan metode harus dipilih sesuai dengan karakteristik dan struktur kotoran. Bersihkan lensa yang dilapisi dengan film antirefleksi, seperti kamera, proyektor geser dan lensa mikroskop, dan gunakan sekitar 20% alkohol dan 80% eter sebagai agen pembersih. Saat membersihkan, gunakan sikat lembut atau bola kapas yang dicelupkan dengan sejumlah kecil zat pembersih untuk membuat gerakan melingkar dari tengah lensa ke luar. Jangan merendam lensa seperti itu dalam agen pembersih untuk membersihkan, dan jangan menyeka mereka saat membersihkannya, jika tidak, film antirefleksi akan rusak dan lensa akan rusak. Ada banyak metode untuk membersihkan permukaan kaca, dan salah satunya dapat dipilih atau dikombinasikan sesuai dengan tingkat polusi asli permukaan kaca, proses pengolahan permukaan kaca berikutnya dan tujuan produk akhir. Kabut minyak, kabut basah air, dan kabut campuran minyak pada kaca optik juga dapat dibersihkan dengan menggunakan zat pembersih, dan metode pembersihannya mirip dengan lensa. Cetakan pada permukaan kaca optik adalah fenomena umum. Ketika kaca optik berjamur, cahaya akan tersebar di permukaannya, membuat gambar kabur, dan dalam kasus serius, instrumen akan dibatalkan. Alasan untuk jamur kaca optik adalah bahwa ada spora mikroba di permukaannya. Ketika suhu dan kelembaban sesuai dan "nutrisi" diperlukan, itu akan tumbuh dengan cepat dan membentuk bintik -bintik jamur. Sangat penting untuk membuat gelas optik anti jamur dan antifouling. Setelah jamur terjadi, itu harus segera dibersihkan. Perhatikan kekeringan.

Spesimen perendaman tanaman adalah menyimpan bahan tanaman segar dalam larutan yang disiapkan oleh bahan kimia, sehingga warna asli dan bentuk tanaman dapat diamati. Spesimen perendaman tanaman memiliki efek pelestarian yang baik dan waktu pelestarian yang lama, memulihkan warna cerah tanaman asli. Ini memiliki banyak keuntungan, dan memberikan dasar ilmiah yang penting untuk penelitian tanaman. Bagaimana spesimen perendaman mempertahankan warna tanaman asli? Alasan mengapa tanaman berwarna hijau adalah bahwa kloroplas tanaman mengandung klorofil. Klorofil adalah senyawa organik yang kompleks. Ada atom magnesium logam di tengah struktur molekulnya. Alasan mengapa klorofil berwarna hijau adalah karena mengandung struktur inti atom magnesium. Jika Anda ingin menjaga hijau asli di tanaman, Anda perlu mengganti ion magnesium dalam klorofil dengan ion tembaga. Metodenya adalah menggunakan asam untuk memisahkan magnesium dari molekul klorofil. Pada saat ini, karena klorofil tidak memiliki magnesium, tanaman menjadi coklat. Kemudian ganti magnesium inti molekul klorofil dengan tembaga. Struktur molekul klorofil dengan atom tembaga karena intinya sangat stabil, tidak mudah untuk terurai dan dihancurkan, dan tidak larut dalam alkohol atau formalin. Oleh karena itu, sampel tanaman yang diperlakukan dengan cara ini dapat diawetkan hijau untuk waktu yang lama dalam larutan pelestarian.

Spesimen daun lilin, juga dikenal sebagai spesimen yang ditekan, adalah jenis spesimen tanaman yang paling umum. Sangat penting untuk mengidentifikasi spesies tanaman dengan benar untuk membuat spesimen yang dapat mempertahankan karakteristik morfologis tanaman alami dan sejati. Keuntungan dari spesimen daun lilin adalah bahwa mereka dapat dilestarikan untuk waktu yang lama. Koleksi spesimen daun lilin dengan sejarah panjang di dunia bahkan dapat ditelusuri kembali ke sekitar abad ke -16. Namun, spesimen daun lilin yang dibuat oleh metode tradisional ini telah memudar karena penghancuran klorofil dan anthocyanin di tanaman. Selain itu, karena spesimen daun lilin menggunakan proses penekan, produk akhir menyajikan keadaan datar yang telah pudar menjadi kuning coklat dan dipasang di atas kertas meja, yang tidak dominan dari sudut pandang estetika. Proses penekanan adalah kunci untuk menggabungkan karakteristik ekologis asli tanaman dengan keindahan artistik. Efek penekan di tempat adalah yang terbaik setelah mengumpulkan spesimen, tetapi operasi yang sebenarnya memakan waktu dan padat karya, yang sulit. Oleh karena itu, tanaman dapat dimasukkan ke dalam kantong plastik yang menyegel sendiri. Untuk mencegah deformasi ekstrusi, perlu untuk mengembang sabuk, tandai informasi pengumpulan yang sesuai dan membawanya kembali untuk menekan setelah penyegelan. Untuk tanaman yang tipis dan rentan terhadap kehilangan air, mereka harus ditekan di lokasi untuk secara akurat menggambarkan karakteristik tanaman. Saat menempatkan tanaman di folder spesimen, cobalah untuk menyebarkan akar, cabang, daun, bunga dan buah -buahan, dan balikkan sebagian untuk lebih memahami karakteristik spesimen.

Penggunaan spesimen biologis beragam dan memainkan peran penting dalam penelitian ilmiah dan pengajaran biologis. Selain itu, mereka juga bernilai tinggi dalam menggambar, pameran, tampilan, dll. Untuk penelitian ilmiah, spesimen biologis dapat memberikan objek dan data yang langsung, andal, akurat dan intuitif untuk penelitian ilmiah, yang sangat penting untuk mempelajari hukum kehidupan, pertumbuhan dan pengembangan hewan dan tumbuhan. Misalnya, ketika ahli taksonomi tanaman secara sistematis mengklasifikasikan berbagai tanaman, mereka harus menggunakan spesimen tanaman sebagai dasar utama, menganalisis perbedaan objek penelitian dalam akar, batang, daun, bunga, buah, biji dan aspek lainnya melalui standar tanaman, sehingga dapat dengan benar dengan benar menilai karakteristik mereka, sehingga dapat secara akurat mengidentifikasi setiap pabrik. Dalam pengajaran, spesimen biologis dapat membuat pengetahuan yang dijelaskan oleh guru lebih intuitif ditampilkan, sehingga memperdalam pemahaman dan kognisi siswa. Misalnya, saat mengunjungi museum hewan dan tumbuhan, kita dapat melihat banyak spesimen hewan dan tumbuhan yang berharga. Pameran spesimen biologis ini memberikan mayoritas anak muda dengan kondisi untuk mempelajari pengetahuan biologis, meningkatkan minat mereka dalam belajar, dan juga meningkatkan pemahaman publik tentang alam, dan menetapkan konsep perlindungan hewan dan tumbuhan yang benar. Spesimen biologis adalah catatan permanen yang paling berharga dalam warisan alami manusia, dan memainkan peran yang tak tergantikan dalam penelitian ilmiah, mempopulerkan pengetahuan ilmiah dan kehidupan sehari -hari manusia. Dengan perkembangan zaman, manusia telah melakukan transisi dalam penggunaan sumber daya alam, dan lingkungan secara bertahap memburuk saat ini. Melestarikan spesies biologis dalam bentuk spesimen juga sangat penting untuk penelitian di masa depan tentang perkembangan biologis dan evolusi.

Di kelas eksperimental, kita semua menggunakan slide biologis, dan kita tahu bahwa slide biologis dapat membantu kita untuk belajar dan meneliti dengan lebih baik, tetapi pasti ada beberapa masalah dalam proses membuat slide biologis. Sekarang mari kita pahami masalah apa yang akan terjadi dalam proses membuat slide biologis. 1. Dehidrasi, transparansi, waktu perendaman lilin yang terlalu lama dan suhu yang terlalu tinggi dapat menyebabkan kerapuhan jaringan. Selain itu, tekstur jaringan itu sendiri juga dapat menyebabkan kerapuhan jaringan. Anda dapat mencoba memotong sambil meniup udara ke irisan lilin, yang mungkin terbebas. 2. Pisau tidak tajam, sudut pisau terlalu besar, dan geser kaca terlalu tebal, yang dapat menyebabkan geser kaca menggulung ke atas. 3. Jika pisau tidak rata, pisau geser tidak lurus, dan pisau geser tidak sejajar dengan blok lilin, lilin mungkin ditekuk. 4. Jika pisau tidak dijepit dengan dasar pisau dan blok lilin, ketebalannya tidak rata jika jaringan terlalu keras, dan spindel mesin geser terlalu maju, atau mesin geser telah dipakai. 5. Retakan pada slide kaca mungkin disebabkan oleh celah pisau, kotoran dalam parafin, kalsifikasi, fragmen tulang atau simpul kabel di jaringan, atau serat kertas kapas. 6. Dehidrasi jaringan yang buruk dapat menyebabkan fenomena bahwa slide kaca tidak terhubung, tidak dapat dipotong, slide kaca sangat tebal, atau blok lilin di belakang slide kaca berwarna putih, disinari, dll. Masih ada banyak masalah dalam operasi yang sebenarnya. Jika Anda tertarik dengan aspek ini, Anda dapat mengikuti kami untuk informasi lebih lanjut.

Untuk membuat bagian beku yang baik, pastikan kualitas bagian, dan pada saat yang sama meningkatkan akurasi diagnosis patologis yang cepat selama operasi, ia memiliki hubungan yang hebat dengan pemahaman dan pemilihan mesin bagian beku. Slicer pembekuan terdiri dari perangkat pengiris dan sistem pendingin. Secara umum, sistem pengiris pembekuan lengkap terdiri dari mesin host (kotak freezer, kepala sampel, meja beku cepat, dll.), Pemegang alat, dan pisau. Bagaimana cara menstandarkan pengoperasian Slicer Beku? Mari kita lihat 1. Pertama, periksa apakah instrumen ditempatkan dengan kuat dan stabil, apakah koneksi antara steker daya dan soket dapat diandalkan, dan apakah landasannya bagus. Kesenjangan tertentu dibiarkan di sekitar untuk memfasilitasi ventilasi dan disipasi panas, dan apakah tegangannya normal. 2. Nyalakan sakelar utama catu daya, periksa/atur suhu freezer, suhu tabel dingin, suhu kepala sampel, dan ketebalan irisan, dan masukkan antarmuka biasa (umumnya, mesin ini Didukung selama 24 jam, dan dalam keadaan startup normal, jadi selama pendinginan meja dingin dimulai di tempat kerja dan dimatikan di tempat kerja). 3. Prosedur Mengiris: Letakkan spesimen "sampel" dengan agen embedding pada kepala sampel, letakkan di atas meja pembekuan cepat untuk "pembekuan cepat", kunci "mengiris roda tangan". Setelah beberapa saat, perbaiki spesimen beku dengan klem sampel, perbaiki spesimen terlebih dahulu, kemudian iris dan tambalan. 4. Redam tambalan ke dalam "larutan alkohol asetat" untuk "memperbaiki". 5. Sampel pemotongan harus diberi nomor dan disimpan untuk siaga atau digunakan dalam proses hilir. 6. Prosedur Shutdown - Kunci roda tangan, bersihkan freezer, buka pintu freezer, dan potong sakelar daya. Mesin ini adalah mesin kerja yang berkelanjutan, yang didukung secara terus menerus. Secara umum, itu tidak dimatikan. Ketika tidak digunakan untuk waktu yang singkat, matikan pendinginan meja dingin, dan atur suhu freezer di atas 0 ℃ untuk berhenti.

(1) Kualitas material akan secara langsung mempengaruhi kualitas irisan. Saat mengambil bahan, dokter harus memiliki pisau material yang tajam lebih awal, untuk menghindari menyeret pisau material bolak -balik, dan lebih baik memotong sejajar dengan serat sebanyak mungkin saat mengambil bahan; (2) Fiksasi adalah bagian dari pekerjaan ruang teknis, dan juga bagian yang tidak dapat diterjemahkan dari seluruh proses produksi. Fiksasi adalah untuk mencegah sel jaringan dari autolisis dan korupsi, mencegah dekomposisi protein oleh enzim dalam sel, dan menjaga struktur aslinya mirip dengan kehidupan (3) Pencucian air setelah fiksasi biasanya diabaikan oleh banyak orang, dan pencucian yang tidak lengkap mudah menyebabkan warna yang buruk dari pelat pendukung dan pewarnaan; (4) Dehidrasi adalah menggunakan dehidrator untuk mengganti air dalam jaringan, yang kondusif untuk penetrasi pelarut organik. Apakah dehidrasi lengkap atau tidak secara langsung terkait dengan apakah jaringan dapat sepenuhnya transparan, dan dehidrasi berlebihan mudah menyebabkan jaringan rapuh; (5) Jika Anda ingin memotong irisan dengan baik, Anda harus memiliki pisau pengiris yang tajam lebih awal. Pisau gerinda adalah teknologi yang relatif mendasar untuk mengiris teknisi. Kualitas penggilingan pisau secara langsung terkait dengan kualitas irisan; (6) Waktu pewarnaan harus ditentukan sesuai dengan bahan bakar lama dan baru, suhu, dan jenis chip. Keripik dapat dipenuhi dengan air hangat atau air keran dan dicuci sepenuhnya untuk mencegah pemudaran yang disebabkan oleh residu asam klorida; (7) Gusi pada lembar penutup tidak boleh terlalu tipis. Saat menyegel lembaran, permen karet harus diisi secara merata dengan lembaran penutup dan permen karet tidak akan meluap. Jaringan harus sepenuhnya ditutup tanpa gelembung dan diberi label. Label harus ditempelkan di sisi kiri atau kanan slide. Jumlahnya dapat dicetak hanya setelah ditulis dengan jelas

Melalui irisan biologis yang kecil, kita dapat memahami karakteristik biologis. Irisan pengajaran biologis memiliki nilai penting dalam pengajaran biologis dan memainkan peran sebagai alat pengajaran yang intuitif. Bagian parafin juga disebut bagian permanen, yang terutama cocok untuk bagian dari berbagai jaringan tanaman. Ketebalan bagian ini mudah dikendalikan, kejelasannya baik, dan dapat dibuat menjadi bagian kontinu, yang mudah dilestarikan untuk waktu yang lama. Produsen irisan parafin memberi tahu Anda cara melestarikan irisan parafin tanaman. Masukkan bahan pengamatan dalam fiksatif spesifik sesegera mungkin, bunuh sel -selnya dengan cepat, dan cobalah untuk menyimpannya dalam keadaan kehidupan alami. Setelah material diperbaiki, perlu dipertahankan untuk digunakan. Dalam proses ini, struktur material diperlukan untuk tidak berubah. Pelarut pelestarian yang umum digunakan adalah larutan alkohol 70%, yang dapat menjaga bahan biasa agar tidak menjadi buruk untuk waktu yang lama. Juga harus disimpan di lemari es. Penggunaan konsentrasi alkohol: Perbaiki tanaman yang lemah dan lembut dengan alkohol konsentrasi rendah, seperti 50%; Gunakan 70% alkohol untuk memperbaiki bahan yang lebih tua atau lebih keras. Jika bahan embrio tanaman diperbaiki, formula dapat dimodifikasi menjadi 50% alkohol 89ml+asam asetat glasial 5ml+formaldehida 40% untuk penyimpanan Keempat sisi irisan jaringan biologis diperbaiki tanpa penyusutan dan deformasi, dan permukaan halus plexiglass di kedua sisi melindungi kedua sisi irisan tetap, yang nyaman untuk mengamati struktur internal jaringan biologis.

Mikroskop fluoresensi adalah alat dasar sitokimia imunofluoresensi. Ini terdiri dari sumber cahaya, sistem pelat filter, sistem optik dan komponen utama lainnya. Amati dengan mikroskop optik biasa. Spesimen geser biasanya diwarnai dengan hematoxylin eosin, kadang -kadang dengan pewarnaan khusus. Pertama -tama, mikroskop optik harus menjaga keadaan alami bahan biologis sejauh mungkin untuk menghindari artefak, deformasi dan distorsi, sehingga bahan biologis harus diperbaiki; Film ini harus tipis dan transparan sebelum dapat dicitrakan di bawah mikroskop optik. Selain memotong material menjadi irisan tipis atau menyebarkannya dengan menekan cahaya atau cara lain, metode lain harus digunakan untuk membuatnya transparan dan dicat, sehingga dapat mengamati lebih baik detail struktur. Faktanya, semua bahan biologis dapat memperoleh spesimen yang memenuhi persyaratan dalam ketebalan dan transparansi melalui embedding parafin, mengiris (atau mengolesi), adhesi, pembubaran lilin, transparansi dan proses lainnya, dan kemudian memperoleh tingkat kontras tertentu melalui prosedur pewarnaan. Iris biologis sering ditempelkan pada slide kaca dengan ukuran standar 26x76mm dan ketebalan 1,1 ^ - 1.3mm. Dua sisi slide kaca harus menjadi bidang paralel. Persyaratan untuk ketebalan slide kaca tidak terlalu ketat, tetapi ketika ketebalannya melebihi jarak kerja bebas dari beberapa kolektor dengan tingkat koreksi yang lebih tinggi, ketebalan slide kaca menjadi penting untuk memfokuskan sumber cahaya dan membentuk gambar dari Bidang berhenti di bidang objek. Dalam hal ini, geser kaca dengan ketebalan 0,9 ^ - 1.0mm sesuai.

Mikroskop fluoresensi adalah sumber cahaya titik dengan efisiensi bercahaya tinggi, yang memancarkan cahaya dari panjang gelombang tertentu (seperti cahaya ultraviolet 3650 atau lampu biru violet 4200) sebagai lampu eksitasi melalui sistem warna filter. Setelah eksitasi, zat fluoresen dalam spesimen memancarkan fluoresensi warna yang berbeda, dan kemudian mengamati melalui amplifikasi lensa objektif dan eyepiece. Dengan cara ini, di bawah latar belakang kontras yang kuat, bahkan fluoresensi sangat lemah, mudah dikenali, dan sensitivitasnya tinggi. Ini terutama digunakan untuk studi struktur dan fungsi sel dan komposisi kimia Sumber cahaya mikroskop fluoresensi tidak bertindak sebagai iluminasi langsung, tetapi sebagai sumber energi untuk merangsang bahan fluoresen di dalam spesimen. Alasan mengapa kita dapat mengamati spesimen bukanlah penerangan sumber cahaya, tetapi fenomena fluoresensi yang disajikan oleh zat fluoresen dalam spesimen setelah penyerapan energi cahaya tereksitasi. Dapat dilihat bahwa karakteristik utama mikroskop fluoresensi adalah bahwa sumber cahaya dapat memasok sejumlah besar cahaya eksitasi dalam kisaran panjang gelombang tertentu, sehingga zat fluoresen dalam spesimen dapat memperoleh intensitas cahaya eksitasi yang diperlukan. Pada saat yang sama, mikroskop fluoresensi harus memiliki sistem filter yang sesuai. Mikroskop fluoresensi adalah alat khusus untuk deteksi mikroskop fluoresensi, itu adalah semacam mikroskop cahaya. Selain struktur dasar dan amplifikasi optik mikroskop optik, ia juga memiliki persyaratan fungsional unik berikut berdasarkan karakteristik fluoresensi: (1) Sumber cahaya yang menyediakan energi yang cukup untuk menggairahkan fluoresensi. (2) Dengan satu set filter warna untuk beradaptasi dengan spektrum eksitasi yang diperlukan oleh zat yang berbeda, spektrum eksitasi yang tepat dipilih dari sumber cahaya, sehingga spektrum diendapkan bertepatan dengan spektrum serapan zat, untuk mendapatkan tersebut fluoresensi maksimum. ( 3) ) Untuk mendapatkan gambar fluoresensi yang lemah, satu set filter warna cut-off juga harus ditetapkan, yang membuat fluoresensi yang diamati yang diperlukan masuk ke sistem untuk pencitraan, dan sisa gelombang cahaya, termasuk yang dipancarkan cahaya, diblokir untuk meningkatkan lapisan gambar. ( 4 ) Sistem optik yang diamplifikasi harus beradaptasi dengan karakteristik fluoresensi, dan akhirnya mendapatkan gambar fluoresensi yang baik dengan kecerahan tinggi dan resolusi tinggi yang dapat diamati dan difoto. (5) Keamanan instrumen. Penerapan lampu merkuri diperlukan untuk mencegah kebocoran lampu ultraviolet dan ledakan lampu merkuri, untuk memastikan keamanan peralatan listrik.

Untuk serangga kecil seperti jumper, kutu dan plentthoppers, jarum tidak boleh dimasukkan secara langsung, tetapi metode khusus harus digunakan. 1 . Interpolasi ganda Ukuran jarum 00 tipis dan pendek, dengan ujung yang tajam dan tanpa tutup jarum. Ini digunakan secara khusus untuk menusuk serangga kecil dan keras. Tubuh serangga diambil dengan forsep kecil, dan spesimen ditusuk secara vertikal dengan microneedle sesuai dengan posisi jarum biasa, dan dimasukkan pada blok gabus segitiga kecil atau kertas keras. Kemudian jarum serangga di atas No. 1 dimasukkan di dekat tepi bawah kertas segitiga, dan kemudian posisi serangga difiksasi dengan tahap tiga tahap. Spesimen dan label yang dimasukkan terletak di sisi kiri jarum serangga. 2. Interpolasi cacing Potong kardus menjadi kartu segitiga isosceles kecil dengan panjang tepi bawah 0,4cm dan tinggi 1cm. Celupkan ujung jarum serangga ke dalam lateks dan tunjuk dengan lembut di ujung kartu segitiga. Kemudian rekatkan tubuh serangga dengan ujung jarum dan letakkan di lateks, dan dengan cepat tarik jarum untuk menghindari mengambil tubuh serangga. Titik kunci dari operasi ini adalah bahwa seharusnya tidak ada terlalu banyak lateks di ujung jarum. Jika spesimen yang direkatkan harus tegak, ujung serangga dapat digunakan untuk mengaduknya. Akhirnya, jarum serangga dapat dimasukkan di dekat tepi bawah film segitiga, dan posisi serangga dapat diperbaiki dengan tahap tiga tahap, dan label dapat dimasukkan ke dalam kotak spesimen untuk penyimpanan jangka panjang.

Dengan penelitian orang tentang biologi, untuk mengamati struktur eksperimental, semakin banyak artikel eksperimental perlu diiris untuk pengamatan eksperimental. Oleh karena itu, berbagai mesin pemotong eksperimental obat biologis telah muncul. Munculnya mekanisme pengiris telah membantu orang untuk memproses berbagai sampel eksperimental. Untuk memfasilitasi pengamatan struktur eksperimental, orang tidak hanya perlu melakukan preprocess sampel uji, tetapi juga untuk secara akurat mengiris ketebalan. Metode pengiris adalah menggunakan alat pemotong tajam untuk memotong jaringan menjadi irisan yang sangat tipis. Materi harus menjalani serangkaian perawatan khusus, seperti fiksasi, dehidrasi, embedding, mengiris, pewarnaan, dll. Prosesnya sangat rumit. Dalam proses produksi, ia juga perlu menjalani serangkaian perawatan fisik dan kimia, yang dapat dipilih secara wajar sesuai dengan persyaratan properti dari berbagai bahan. Meskipun proses penentuan rumit dan teknologinya kompleks, ia dapat mempertahankan hubungan normal antara sel dan mempertahankan penampilan asli sel untuk waktu yang lebih baik dan lebih lama, sehingga masih merupakan metode utama untuk membuat mikroskop cahaya. Slicer yang ada biasanya menggunakan pengiris manual. Stabilitas dan akurasi pengiris rendah, dan ketebalan pengiris tidak konsisten. Ini adalah perangkat slicer biologis yang mudah dioperasikan, fleksibel untuk digunakan, dan nyaman untuk meningkatkan stabilitas dan akurasi pengiris. Saat ini, ada slicer jaringan biologis yang umum digunakan, slicers parafin, slicer beku dan sebagainya. Slicer jaringan biologis terkenal dengan akurasi dan stabilitasnya yang tinggi. Ini diumpankan oleh motor loncatan, memiliki fungsi retraksi sampel dan penghitungan irisan, dan diposisikan secara akurat pada sumbu x / y dari kepala sampel. Prinsip kerja slicer relatif sederhana, yaitu, dengan menggunakan permukaan pemotongan tajam dari slicer, benda dan bahan dipotong -potong sesuai dengan proporsi atau lebar titik. Sehingga cocok untuk produksi atau farmasi atau penggunaan lainnya. Tujuan utama dari slicer biologis adalah untuk mengiris bahan seperti bahan obat, jaringan sel dan lilin, sehingga dapat memfasilitasi proses mereka berikutnya.

1. Fiksasi penyisipan pin Secara umum, spesimen segar setelah pembunuhan racun dikumpulkan. Jika spesimen kering dan keras, mereka harus ditempatkan dalam pelembut selama 1-2 hari sebelum jarum dimasukkan untuk memperbaiki cacing; Dengan hati -hati mengeluarkan serangga dari pelembut dengan pinset dan meletakkannya di seluruh tahap postur, menghindari menyentuh dengan tangan sejauh mungkin; Pilih jarum serangga yang sesuai sesuai dengan ukuran tubuh serangga, masukkan jarum serangga dari garis tengah yang sedikit kanan bagian belakang tubuh serangga, dan pastikan keluar dari perut, umumnya membuat jarum di tengah dari tengah dua kaki. 2. menyebarkan sayap seseorang dan meluruskan posturnya Kupu -kupu, capung, dan serangga lainnya perlu melebarkan sayapnya. Saat menyebarkan sayap, pertama masukkan spesimen dengan jarum ke dalam pelat penyebaran dengan hati -hati, sehingga tubuh serangga jatuh ke alur, dan sayap dan pelat penyebaran berada dalam posisi horizontal. Kemudian buka sayap dengan forceps untuk membuat ujung trailing sayap depan tegak lurus terhadap tubuh. Setelah sayap disesuaikan dengan posisi yang ideal, tekan sayap dengan kertas strip di satu tangan, dan masukkan pin di sekitar kertas strip di tangan lain, tetapi tidak ke sayap, sehingga kertas strip dan pelat ekstensi sayap dapat digabungkan secara ketat untuk memperbaiki sayap. Setelah melebarkan sayap Anda, sesuaikan posisi antena, kaki, dan perut Anda, dan Anda akan selesai. 3. Pengeringan dan penyimpanan Setelah spesimen menyelesaikan tindakan di atas, hampir selesai. Sisanya adalah untuk mengeringkan spesimen. Secara umum, dapat dikeringkan dalam kotak suhu konstan pada 50 ° C selama sekitar satu minggu. Jika tidak ada kotak pengeringan, itu juga dapat ditempatkan di tempat berventilasi dalam ruangan untuk pengeringan. Setelah pengeringan, spesimen dapat disimpan dalam kotak spesimen. Kotak spesimen harus disimpan di tempat yang berventilasi dan kering. Setiap spesimen mewakili kehidupan, yang harus dihargai dan digunakan. Misalnya, amati dengan hati -hati bentuknya, dan cobalah untuk mengklasifikasikan dan melakukan penelitian ilmiah lainnya.

Bagian parafin adalah metode yang paling banyak digunakan dalam teknik histologis konvensional. Ini tidak hanya digunakan untuk mengamati struktur morfologis sel dan jaringan normal, tetapi juga metode utama yang digunakan oleh patologi, pengobatan forensik dan disiplin ilmu lain untuk mempelajari, mengamati dan menilai perubahan morfologis sel dan jaringan, dan telah banyak digunakan di banyak disiplin dan bidang lainnya. Metode penetapan parafin meliputi langkah -langkah ekstraksi material, fiksasi, pencucian dan dehidrasi, transparansi, perendaman lilin, embedding, pemasangan dan pasting, dewaxing, pewarnaan, dehidrasi, transparansi dan penyegelan. Bagian parafin biasanya digunakan untuk pewarnaan atau IHC. Ketebalannya lebih tipis, umumnya 4um, prosesnya lebih kompleks, dan kualitas sampel tergantung pada jenis dan komposisi jaringan yang berbeda, yang lebih tergantung pada pengalaman produsen. Perlu dioptimalkan secara konstan dalam proses eksperimental untuk mendapatkan kondisi eksperimental terbaik.

Pembesaran mikroskop biologis biasa dapat mencapai 1000-1600 kali. Secara umum, mikroorganisme seperti jamur dan ragi relatif besar, dan hasil yang baik dapat diperoleh dengan lensa objektif berdaya rendah dan lensa objektif berdaya tinggi. Namun, untuk melihat morfologi bakteri bernoda dan struktur morfologis sel eukariotik, yang terbaik adalah menggunakan lensa minyak. Lensa minyak adalah sejenis lensa mikroskop objektif. Nama lengkapnya adalah lensa objektif bernoda minyak. Media lensa objektif mikroskop termasuk udara, air dan minyak. Dua yang terakhir digunakan untuk lensa objektif resolusi tinggi. Kuasai penggunaan cermin oli yang benar 1. Saat menggunakan lensa minyak, aspal drop pertama pada slide kaca untuk meningkatkan cahaya memasuki lensa oli, meningkatkan kecerahan bidang visual, dan membuat gambar objek lebih jelas. 2. Letakkan mikroskop tegak di atas meja, dan jangan menekuk lengan cermin untuk memiringkan panggung, untuk menghindari tumpahan aspal, mempengaruhi pengamatan dan mencemari meja. 3. AIMING Ketika cahaya alami digunakan sebagai sumber cahaya, reflektor bidang harus digunakan; Jika cahaya buatan digunakan, cermin cekung harus digunakan. Pertama, buka aperture dan putar reflektor untuk memusatkan cahaya pada kolektor cahaya. Anda dapat memindahkan kolektor cahaya ke atas dan ke bawah dan skala aperture sesuai kebutuhan untuk mendapatkan kecerahan terbaik. 4. Penyesuaian Fokus: ① Tempatkan spesimen di atas panggung, perbaiki dengan pendorong spesimen, dan pindahkan bagian yang akan diperiksa di bawah lensa objektif. Pertama temukan posisi spesimen dengan lensa daya rendah, kemudian angkat laras lensa, jatuhkan setetes oli lensa pada spesimen yang akan diuji, dan kemudian ubah lensa oli untuk observasi. ② Putar adjuster kasar untuk perlahan -lahan menaikkan panggung (atau secara bertahap menurunkan lensa lensa) sampai lensa minyak direndam dalam minyak. Pada saat ini, mata harus diamati dari samping untuk menghindari menghancurkan spesimen dan merusak lensa. ③ Kemudian pindahkan kedua mata ke lensa mata, amati dari lensa mata, dan perlahan -lahan putar adjuster kasar (turunkan panggung atau angkat laras lensa) ke arah yang berlawanan. Ketika ada gambar objek yang kabur, ubah ke adjuster halus, dan putar sampai gambar objek jelas. ④ Setelah pengamatan, laras lensa harus dinaikkan terlebih dahulu, dan lensa minyak harus dipelintir ke satu sisi sebelum menurunkan spesimen. Setelah lensa oli digunakan, oli pada lensa harus segera dihapus dengan kertas lensa penghapusan. Jika oli lensa kering pada lensa, lensa dapat dibersihkan dengan sedikit xylene yang dicelupkan ke dalam kertas lensa lensa, dan kemudian residu xylene dapat dibersihkan dengan kertas lensa kering untuk mencegah xilena menembus dan melarutkan gusi Digunakan untuk memperbaiki lensa, menyebabkan lensa bergeser atau jatuh.

Spesimen slide permanen dapat disimpan dan digunakan secara permanen. Metode pemuatan integral: Ini adalah metode untuk menyegel seluruh organisme kecil atau bagian organ untuk membuat spesimen slide. This method is generally applicable to organisms or organs with small body or a thin body, such as unicellular algae, filamentous algae, fungi, soft bryophytes, protoplasts and sporangia of ferns, epidermis of higher plants, florets and pollen grains, protozoans, wings, antena, kaki serangga, dan embrio ayam Perhatian harus diberikan pada: (1) Saat memegang slide, itu harus disimpan rata atau ditempatkan di platform. Saat meneteskan air, jumlah air harus sesuai, sehingga hanya ditutupi oleh kaca penutup. (2) Bahan harus dibuka pada bidang yang sama tanpa tumpang tindih dengan membedah jarum atau forceps. (3) Saat menempatkan kaca penutup, tutup perlahan -lahan pada tetesan air dari satu sisi untuk mencegah gelembung. (4) Saat pewarnaan, letakkan setetes cairan pewarnaan di satu sisi kaca penutup, dan hisap dari sisi lain dengan kertas penyerap untuk membuat spesimen di bawah kaca penutup berwarna seragam. Setelah pewarnaan, gunakan metode yang sama, jatuhkan setetes air, hisap larutan pewarnaan, dan amati di bawah mikroskop.

1. Komponen yang berbeda Mikroskop elektron memiliki tiga bagian, yaitu, laras lensa, perangkat vakum dan kabinet daya. Mikroskop optik terutama terdiri dari empat bagian, yaitu, lensa objektif, lensa mata, reflektor dan kondensor. 2. Prinsip pencitraan berbeda. Mikroskop elektron menggunakan sinar elektron untuk menembus sampel, dan kemudian memperbesar gambar dengan lensa. Mikroskop optik terutama menggunakan prinsip pencitraan pembesar lensa cembung untuk memperbesar sampel. 3. Sumber iluminasi berbeda. Sumber iluminasi yang digunakan oleh mikroskop elektron adalah aliran elektron yang dipancarkan oleh pistol elektron; Sumber iluminasi mikroskop optik adalah cahaya terlihat (sinar matahari atau cahaya). Karena panjang gelombang aliran elektron jauh lebih pendek daripada panjang gelombang gelombang cahaya, pembesaran dan resolusi mikroskop elektron secara signifikan lebih tinggi daripada mikroskop cahaya. 4. Lensa berbeda. Lensa objektif untuk pembesar dalam mikroskop elektron adalah lensa elektromagnetik (kumparan elektromagnetik berbentuk cincin yang dapat menghasilkan medan magnet di bagian tengah); Lensa objektif mikroskop optik adalah lensa optik yang terbuat dari kaca. Ada tiga kelompok lensa elektromagnetik dalam mikroskop elektron, yang setara dengan lensa kondensor, lensa objektif dan lensa eyepiece di lensa optik. 5. Kegunaan yang berbeda Karena resolusi yang tinggi, mikroskop elektron dapat digunakan untuk mengamati struktur material halus yang tidak dapat dibedakan dengan mikroskop biasa, dan juga dapat digunakan untuk membantu menganalisis komposisi material. Mikroskop optik terutama digunakan untuk pengamatan bahan mikroskopis dalam biologi dan kedokteran, dan sebagai alat eksperimental untuk siswa dalam pengajaran.