Haberler

Doku örneklemesi dilim yapmak için önemli prosedürlerden biridir. Öğretimin, bilimsel araştırma ve dış denetimin özel gereksinimlerine göre, doku insan veya hayvandan alınır ve örnekleme yeri ve yöntemi belirlenir. Özel gereksinimler aşağıdaki gibidir: 1. Orijinal morfolojik yapıyı sağlamak için taze malzemeler 2. Doku Bloğunun Boyutu İdeal doku bloğu hacmi 2.0x2.0x0.3cm'dir, böylece fiksatif hızlı ve eşit olarak dokuya nüfuz edebilir 3. Doku bloğunu sıkmayın. Doku bloğunun bıçağı keskin olmalıdır. Ekstrüzyon nedeniyle dokunun ve hücrelerin deformasyonunu önlemek için dokuyu çok sıkı kenetlemeyin. 4. Örnekleme konumunu standartlaştırın. Örnekleme anatomik pozisyona göre doğru olmalı ve gereksinimlere göre standartlaştırılmalıdır. 5. Doku bloğu bölümünün seçilmesi, her dokunun yapısına göre bölümünün yönünü belirler. Boyuna ve enine kesitler genellikle dokunun morfolojik yapısını göstermenin anahtarıdır. 6. Malzemeyi temiz tutun. Doku bloğunda kir, mukus vb. Varsa, sabitleme çözeltisine konulmadan önce su ile temizlenebilir. 7. Dokunun orijinal şeklini koruyun. Taze dokuyu sabitledikten sonra, dokunun çoğu küçülür, hatta bazen tamamen deforme olur. Bu nedenle, prototipi mümkün olduğunca korumak için dokuyu düzleştirin.

Günlük yaşamımızda, özellikle çam, köknar, selvi, ginkgo ve her türlü çiçekli ve meyve bitkisi dahil olmak üzere her türlü bitkiye, özellikle tohum bitkilerine maruz kalıyoruz. Bitki sınıflandırmasını sistematik olarak incelemek için bitki örneklerini kullanabiliriz. Bitki örnekleri, kullanım amacına göre aşağıdaki kategorilere ayrılabilir. (1) Filogenetik örnek: Hazırlığın amacı, bir bitkinin yaşam öyküsünü, yani bir bitkinin tohum çimlenmesinden büyüme, gelişme, çiçeklenme ve meyve vermeye kadar her aşamada büyümesini gözlemlemek ve incelemektir. Biyolojik öğretim, giriş, yetiştirme ve bilimsel araştırmalarda yaygın olarak kullanılır. (2) Bütün örnek: Genellikle bitkileri, bilimsel isimleri ve Çin bitkisel ilaçlarını tanımlamak için kullanılır. Bu örnek aynı zamanda bir bölgedeki bitki örtüsü araştırması için de kullanılır. Örneğin, bir okulun veya dağın bitki kaynaklarını araştırın. Yüksek bitkilerin kökleri, sapları, yaprakları ve diğer bitkisel organları, bitkileri tanımlamak için temellerden biridir, ancak farklı büyüme ortamları nedeniyle genellikle farklıdır. Çiçekler ve meyveler, bitkilerin doğal özelliklerini en iyi şekilde yansıtabilen ve bitkileri tanımlamak ve tanımlamak için önemli bir temeldir. Örnekleri toplarken, tam kök, gövde, yaprak, çiçek ve meyve içeren örnekleri toplamaya çalışın. Otlar da yeraltında kazılmalıdır. Sporangia, köksap, ölçek ve endumentumun şekli ve düzenlemesi, toplama sırasında dikkat edilmesi gereken eğrelti otlarının önemli taksonomik özellikleridir. Tüm örnek genellikle balmumu yaprağı örneği ve birincil renk daldırma örneğine yapılır. (3) Anatomik örnek: Hazırlığın amacı, bir bitki organının iç organizasyon yapısını gözlemlemek ve incelemektir. Örneğin, baz plakası, tomurcuk, ölçek yaprağı, lifli kök, vb. Yapısını gözlemlemek için soğan ampulünü disope edin. Salatalıkların lateral membran plasentasyonu ve tohum rulman pozisyonu enine diseksiyon ile gözlenmiştir; Şeftali çiçeği, çeşitli parçalarını ve morfolojisini gözlemlemek için uzunlamasına diseke edildi. Bu tür bir örnek toplamak için, tüm şubeyi toplamak yerine sadece sağlıklı ve temsili bir organ seçmeniz gerekir. Anatomik örnekler genellikle antiseptik emprenye edilmiş örneklere yapılır. (4) Karşılaştırma örneği: Karşılaştırma örneği esas olarak farklı bitkilerin bir organının benzerliklerini ve farklılıklarını karşılaştırmak için kullanılır. Örneğin, dikotiledonların ve monokotiledonların tohum morfolojisini karşılaştırmak için, tecavüz, soya fasulyesi, salatalık, domates vb. Olgun meyvelerini toplamak, kabuğunu çıkarmak, tohumları kurutmak ve ayrıca buğday, pirinç meyvelerini toplamak gerekir. ve karşılaştırma için mısır. Karşılaştırma örneği balmumu yaprağı örneğine veya hava kurutulmuş numuneye yapılabilir ve birincil renkle batırılmış meyve daha iyidir.

Mikroskopun uygun şekilde bakımı, mikroskopun servis ömrünü uzatabilir. Bugün, optik camın nasıl temizleneceğini açıklayacağım. İki tip cam yüzey temizliği vardır: atom seviyesi temizleme yüzeyi ve proses teknolojisi temizleme yüzeyi. Özel bilimsel uygulamalar için atom seviyesi temizliği gereklidir, çünkü ultra vakum koşulları altında gerçekleştirilmesi gerekir. Genel olarak, ürün işleme gereksinimlerini karşılamak için sadece işlem teknolojisindeki temiz yüzey gereklidir. Optik cam lensler, prizmalar, lensler vb. İçin kullanılır. Üretim ve kullanımda, görüntüleme ve ışık geçirgenliğini etkileyen yağlı kir, su ıslak kiri, parmak izleri vb. Almak kolaydır. Optik camı temizlemek için, kirin özelliklerine ve yapısına göre farklı temizlik maddeleri, aletler ve yöntemler seçilmelidir. Kamera, slayt projektörü ve mikroskop lensi gibi antiflection filmi ile kaplanmış lensi temizleyin ve temizlik maddesi olarak yaklaşık% 20 alkol ve% 80 eter kullanın. Temizlenirken, lensin merkezinden dışa doğru dairesel bir hareket yapmak için az miktarda temizlik ajanı ile batırılmış yumuşak bir fırça veya pamuklu top kullanın. Bu tür lensleri temizlik için temizleme maddesine daldırmayın ve temizlerken onları sertleştirmeyin, aksi takdirde antiflection filmi hasar görür ve lens hasar görür. Cam yüzeyini temizlemek için birçok yöntem vardır ve bunlardan biri cam yüzeyin orijinal kirlilik derecesine, sonraki cam yüzey işlem sürecine ve nihai ürünün amacına göre seçilebilir veya birleştirilebilir. Optik camdaki yağ sisi, su ıslak sisi ve yağ-su karışık sisi de temizleme maddesi kullanılarak temizlenebilir ve temizleme yöntemi lensinkine benzer. Optik camın yüzeyindeki küf yaygın bir fenomendir. Optik cam küflü olduğunda, ışık yüzeyine dağılacak, görüntüyü bulanıklaştıracak ve ciddi durumlarda alet hurdaya çıkarılacaktır. Optik camın küfünün nedeni, yüzeyinde mikrobiyal sporların olmasıdır. Sıcaklık ve nem uygun olduğunda ve "besin maddeleri" gerektiğinde, hızla büyüyecek ve küf noktaları oluşturacaktır. Optik cam anti küf ve anttifouling yapmak özellikle önemlidir. Kül meydana geldiğinde hemen temizlenmelidir. Kuruluk'a dikkat edin.

Bitki ıslatma örneği, taze bitki malzemelerini kimyasallar tarafından hazırlanan çözeltiye saklamaktır, böylece bitkilerin orijinal rengi ve şekli gözlemlenebilir. Bitki ıslatma örneği, bitkilerin orijinal parlak rengini geri yükleyerek iyi bir koruma etkisi ve uzun bir koruma süresine sahiptir. Birçok avantajı vardır ve bitki araştırmaları için temel bir bilimsel temel sağlar. Islatma örneği bitkilerin orijinal rengini nasıl korur? Bitkilerin yeşil olmasının nedeni, bitkilerin kloroplastlarının klorofil içermesidir. Klorofil karmaşık bir organik bileşiktir. Moleküler yapısının merkezinde metal bir magnezyum atomu vardır. Klorofilin yeşil olmasının nedeni, magnezyum atomunun çekirdek yapısını içermesidir. Orijinal yeşili bitkilerde tutmak istiyorsanız, klorofildeki magnezyum iyonlarını bakır iyonlarla değiştirmeniz gerekir. Yöntemi, magnezyumun klorofil moleküllerinden ayırmak için asit kullanmaktır. Şu anda, klorofil magnezyumdan yoksun olduğu için bitki kahverengi olur. Daha sonra klorofil molekülünün çekirdek magnezyumunu bakır ile değiştirin. Çekirdek çok kararlı olduğu için bakır atomlu klorofil molekülünün yapısının ayrışması ve yok edilmesi kolay değildir ve alkol veya formalinde çözünür değildir. Bu nedenle, bu şekilde tedavi edilen bitki örnekleri, koruma çözeltisinde uzun süre yeşil olarak korunabilir.

Preslenmiş örnek olarak da bilinen balmumu yaprağı örneği, en yaygın bitki örneğidir. Bitkilerin doğal ve gerçek morfolojik özelliklerini koruyabilecek örnekler yapmak için bitki türlerini doğru bir şekilde tanımlamak çok önemlidir. Balmumu yaprağı örneklerinin avantajı, uzun süre korunabilmeleridir. Dünyada uzun bir geçmişe sahip balmumu yaprağı örneklerinin toplanması 16. yüzyıla kadar uzanabilir. Bununla birlikte, bu geleneksel yöntemle yapılan balmumu yaprağı örneği, bitkideki klorofil ve antosiyaninlerin yok edilmesi nedeniyle solmuş olmuştur. Ek olarak, balmumu yaprağı örneği presleme işlemini kullandığından, nihai ürün kahverengi sarı haline getirilmiş ve estetik bakış açısından baskın olmayan masa kağıdına sabitlenmiş düz bir durum sunar. Bastırma işlemi, bitkilerin orijinal ekolojik özelliklerini sanatsal güzellikle birleştirmenin anahtarıdır. Yerinde baskı etkisi, örneği topladıktan sonra en iyisidir, ancak gerçek işlem zaman alıcı ve emek yoğundur, bu zordur. Bu nedenle, bitki kendini sızdırmaz plastik torbaya konulabilir. Ekstrüzyon deformasyonunu önlemek için, kayışı şişirmek, karşılık gelen toplama bilgilerini işaretlemek ve sızdırmazlıktan sonra preslemek için geri getirmek gerekir. Su kaybına karşı ince ve savunmasız bitkiler için, bitki özelliklerini doğru bir şekilde tanımlamak için sahada bastırılmalıdır. Bitkileri numune klasörüne yerleştirirken, kökleri, dalları, yaprakları, çiçekleri ve meyveleri yaymaya çalışın ve örnek özelliklerini daha iyi anlamak için kısmen çevirin.

Biyolojik örneklerin kullanımı çeşitlidir ve bilimsel araştırma ve biyolojik öğretimde önemli bir rol oynamaktadır. Ayrıca, çizim, sergi, görüntüleme vb. Bilimsel araştırmalar için biyolojik örnekler, hayvan ve bitkilerin yaşam, büyüme ve kalkınma yasalarını incelemek için büyük önem taşıyan bilimsel araştırmalar için doğrudan, güvenilir, doğru ve sezgisel nesneler ve veriler sağlayabilir. Örneğin, bitki taksonomistleri çeşitli bitkileri sistematik olarak sınıflandırdıklarında, bitki örneklerini ana temel olarak almalı, kök, gövde, yaprak, çiçek, meyve, tohum ve diğer yönlerindeki farklılıkları, bitki standartları aracılığıyla doğru şekilde analiz etmelidir. Her bir bitkiyi doğru bir şekilde tanımlamak için özelliklerini değerlendirin. Öğretimde, biyolojik örnekler öğretmenler tarafından açıklanan bilgileri daha sezgisel olarak sergileyebilir, böylece öğrencilerin anlayışını ve bilişini derinleştirebilir. Örneğin, hayvan ve bitki müzesini ziyaret ederken, birçok değerli hayvan ve bitki örneği görebiliriz. Bu biyolojik örneklerin sergisi, gençlerin çoğunu biyolojik bilgi öğrenmek, öğrenmeye olan ilgilerini geliştirmek için koşulları sağlar ve halkın doğa anlayışını geliştirir ve doğru bir hayvan ve bitki koruma kavramı oluşturur. Biyolojik örnekler, insan doğal mirasında en değerli kalıcı kayıtlardır ve bilimsel araştırma, bilimsel bilgi popülerleştirme ve insan günlük yaşamında yeri doldurulamaz bir rol oynamaktadır. Zamanın gelişmesiyle, insanlar doğal kaynakların kullanımında bir geçiş yaptı ve çevre bugün yavaş yavaş kötüleşti. Biyolojik türlerin örnekler şeklinde korunması, biyolojik gelişim ve evrim seyri hakkında gelecekteki araştırmalar için de büyük önem taşımaktadır.

Deneysel sınıfta hepimiz biyolojik slaytlar kullandık ve biyolojik slaytların daha iyi çalışma ve araştırmamıza yardımcı olabileceğini biliyoruz, ancak biyolojik slaytlar yapma sürecinde kaçınılmaz olarak bazı sorunlar var. Şimdi biyolojik slaytlar yapma sürecinde hangi sorunların olacağını anlayalım. 1. Dehidrasyon, şeffaflık, çok uzun balmumu ıslatma süresi ve çok yüksek sıcaklık doku kırılganlığına neden olabilir. Ek olarak, dokunun dokusu da doku kırılganlığına neden olabilir. Balmumu dilimine hava üflerken rahatlamaya çalışabilirsiniz. 2. Bıçak keskin değildir, bıçak açısı çok büyüktür ve cam slayt çok kalındır, bu da cam slaydın yuvarlanmasına neden olabilir. 3. Bıçak düzensizse, slayt bıçağı düz değildir ve slayt bıçağı balmumu bloğuna paralel değildir, balmumu bükülebilir. 4. Bıçak bıçak tabanı ve balmumu bloğu ile kenetlenmezse, doku çok sertse ve slayt makinesi iş mili çok ileri veya slayt makinesi giyilirse kalınlık düzensiz olacaktır. 5. Cam slayttaki çatlaklar bıçak boşluğu, parafindeki safsızlıklar, kalsifikasyon, kemik fragmanları veya dokudaki kablolu düğümlerden veya pamuklu kağıt liflerinden kaynaklanabilir. 6. Kötü doku dehidrasyonu, cam slaytların bağlı olmadığı, kesilemeyeceği, cam slaytların çok kalın veya cam slaytlarının arkasındaki balmumu bloklarının beyaz, invajinlenmiş vb. Olgusuna yol açabilir. Gerçek operasyonda hala birçok sorun var. Bu yönüyle ilgileniyorsanız, daha fazla bilgi için bizi takip edebilirsiniz.

İyi bir dondurulmuş bölüm yapmak, bölümün kalitesini sağlamak ve aynı zamanda operasyon sırasında hızlı patolojik tanının doğruluğunu geliştirmek için, dondurulmuş bölüm makinesinin anlaşılması ve seçimi ile büyük bir ilişkisi vardır. Dondurucu dilimleyici bir dilimleme cihazı ve bir soğutma sisteminden oluşur. Genel olarak, tam bir dondurucu dilimleme sistemi bir ana bilgisayar makinesinden (dondurucu kutusu, numune kafası, hızlı donma masası, vb.), Bir takım tutucusundan ve bir bıçaktan oluşur. Dondurulmuş dilimleyicinin çalışması nasıl standartlaştırılır? Bir bakalım 1. İlk olarak, aletin sıkı ve stabil bir şekilde yerleştirilip yerleştirilmediğini, elektrik fişi ile soket arasındaki bağlantının güvenilir olup olmadığını ve topraklamanın iyi olup olmadığını kontrol edin. Havalandırma ve ısı dağılmasını ve voltajın normal olup olmadığını kolaylaştırmak için belirli bir boşluk bırakılır. 2. Güç kaynağının ana anahtarını açın, dondurucunun sıcaklığını, soğuk masanın sıcaklığını, numune kafasının sıcaklığını ve dilim kalınlığını kontrol edin/ayarlayın ve normal arayüze girin (genellikle bu makine 24 saat boyunca açılır ve normal başlangıç ​​durumundadır, böylece soğuk masa soğutması işte başlatıldığı ve işte kapatıldığı sürece). 3. Dilimleme Prosedürü: "Örneklenmiş" numuneyi örnek kafasına gömme aracısı ile koyun, "hızlı donma" için hızlı donma tablosuna yerleştirin, "dilimleme el çarkını" kilitleyin. Bir süre sonra, dondurulmuş örneği numune kelepçesi ile sabitleyin, önce numuneyi onarın, ardından dilimleyin ve yama. 4. Yamayı "düzeltmek" için "asetik alkol çözeltisine" daldırın. 5. Kesilen numuneler bekleme için numaralandırılmalı ve saklanmalı veya aşağı akış işleminde kullanılmalıdır. 6. Kapatma Prosedürü - El çarkını kilitleyin, dondurucuyu temizleyin, dondurucunun kapısını açın ve güç anahtarını kesin. Bu makine, sürekli olarak çalışan sürekli bir çalışma makinesidir. Genellikle kapanmaz. Kısa bir süre kullanılmadığında, soğuk masanın soğutmasını kapatın ve dondurucunun sıcaklığını durdurmak için 0 ℃ 'nın üzerine koyun.

(1) Malzemelerin kalitesi, dilimlerin kalitesini doğrudan etkileyecektir. Malzeme alırken, doktorların daha önce keskin bir malzeme bıçağı olması gerekir, böylece malzeme bıçağını ileri geri sürüklemekten kaçınmak için ve malzeme alırken elyafla mümkün olduğunca paralel olarak kesmek daha iyidir; (2) Fiksasyon, teknik odanın çalışmalarının bir parçası ve aynı zamanda tüm üretim sürecinin tahriş edilemez bir parçasıdır. Fiksasyon, doku hücrelerinin otoliz ve yolsuzluktan kaynaklanmasını önlemek, proteinlerin hücrelerdeki enzimler tarafından ayrışmasını önlemek ve orijinal yapılarını hayata benzer tutmaktır. (3) Fiksasyondan sonra su yıkama genellikle birçok kişi tarafından göz ardı edilir ve eksik yıkama, destek plakasının ve boyamanın zayıf rengine neden olmak kolaydır; (4) DeHidrasyon, organik çözücülerin penetrasyonuna elverişli olan dokudaki suyu değiştirmek için bir kurutucu kullanmaktır. Dehidrasyonun tamamlanıp tamamlanmadığı, dokunun tamamen şeffaf olup olmadığı ve aşırı dehidrasyonun kırılgan dokuya neden olması ile doğrudan ilişkilidir; (5) Bir dilimi iyi kesmek istiyorsanız, daha önce keskin bir dilimleme bıçağınız olmalıdır. Öğütme bıçağı, teknisyenleri dilimlemek için nispeten temel bir teknolojidir. Bıçak taşlama kalitesi doğrudan dilimin kalitesi ile ilişkilidir; (6) Boyama süresi, eski ve yeni yakıt, sıcaklık ve yonga tipine göre belirlenmelidir. Yongalar ılık su veya musluk suyu ile maviye edilebilir ve hidroklorik asit kalıntılarının neden olduğu solmayı önlemek için tamamen yıkanabilir; (7) Kapak sayfasındaki sakız çok ince olmamalıdır. Sayfayı sızdırmazken, sakız kapak tabakası ile eşit olarak doldurulmalı ve sakız taşmayacaktır. Doku tamamen kabarcıklar olmadan örtülmeli ve etiketlenmelidir. Etiket slaytın sol veya sağ tarafına yapıştırılmalıdır. Sayı ancak açıkça yazıldıktan sonra yazdırılabilir

Küçük biyolojik dilimler aracılığıyla biyolojik özellikleri anlayabiliriz. Biyolojik öğretim dilimi biyolojik öğretimde önemli bir değere sahiptir ve sezgisel bir öğretim aracı olarak rol oynar. Parafin bölümü, esas olarak çeşitli bitki dokuları bölümü için uygun olan kalıcı bölüm olarak da adlandırılır. Bölümün kalınlığını kontrol etmek kolaydır, netlik iyidir ve uzun süre korunması kolay olan sürekli bölümlere dönüştürülebilir. Parafin dilimleri üreticisi, bitki parafin dilimlerinin nasıl korunacağını anlatır. Gözlem materyalini mümkün olan en kısa sürede belirli bir fiksatif haline getirin, hücrelerini hızlı bir şekilde öldürün ve doğal yaşam durumunda tutmaya çalışın. Malzeme sabitlendikten sonra, kullanım için korunması gerekir. Bu işlemde, malzemenin yapısının değişmemesi gerekir. Yaygın olarak kullanılan koruma çözücüsü, sıradan malzemelerin uzun süre kötüleşmesini önleyebilen% 70 alkol çözeltisidir. Ayrıca buzdolabında saklanması da gereklidir. Alkol konsantrasyonu kullanımı:%50 gibi düşük konsantrasyon alkollü zayıf ve ihale bitkilerini sabitleyin; Eski veya daha sert malzemeleri düzeltmek için% 70 alkol kullanın. Bitki embriyo materyalleri sabitlenirse, formül% 50 alkol 89ml+buzul asetik asit 5ml+formaldehit olarak değiştirilebilir. Biyolojik doku diliminin dört tarafı büzülme ve deformasyon olmadan sabitlenir ve her iki taraftaki pleksiglasın pürüzsüz yüzeyi, biyolojik dokunun iç yapısını gözlemlemek için uygun olan sabit dilimin iki tarafını korur.

Floresan mikroskobu, immünofloresan sitokimyanın temel bir aracıdır. Işık kaynağı, filtre plakası sistemi, optik sistem ve diğer ana bileşenlerden oluşur. Sıradan optik mikroskop ile gözlemleyin. Slayt örnekleri genellikle bazen özel boyama ile hematoksilin eozin ile boyanır. Her şeyden önce, optik mikroskop, artefakt, deformasyon ve bozulmayı önlemek için biyolojik malzemelerin doğal durumunu mümkün olduğunca korumalıdır, bu nedenle biyolojik malzemeler sabitlenmelidir; Film, optik mikroskop altında görüntülenmeden önce ince ve şeffaf olmalıdır. Malzemeyi ince dilimler halinde kesmenin veya ışık presleme veya diğer yollarla dağıtmanın yanı sıra, yapının ayrıntılarını daha iyi gözlemlemek için şeffaf ve boyalı hale getirmek için diğer yöntemler kullanılmalıdır. Aslında, tüm biyolojik materyaller, parafin gömme, dilimleme (veya bulaşma), yapışma, balmumu çözünmesi, şeffaflık ve diğer işlemler yoluyla kalınlık ve şeffaflık gereksinimlerini karşılayan örnekler elde edebilir ve daha sonra boyama prosedürleri yoluyla belirli bir kontrast elde edebilir. Biyolojik dilim genellikle standart boyut 26x76mm ve 1.1 ^ - 1.3mm kalınlığında cam slayt üzerine yapıştırılır. Cam slaydın iki tarafı paralel düzlemler olmalıdır. Cam slaytın kalınlığı için gereksinim çok katı değildir, ancak kalınlığı daha yüksek düzeltme derecesine sahip bazı koleksiyoncuların serbest çalışma mesafesini aştığında, cam slaytın kalınlığı ışık kaynağını odaklamak ve görüntüsünü oluşturmak için önemli hale gelir. Nesne düzleminde alan durması. Bu durumda, 0.9 ^ - 1.0mm kalınlığında bir cam slayt uygundur.

Floresan mikroskobu, filtre renk sisteminden uyarma ışığı olarak belirli bir dalga boyunda (Ultraviyole ışık 3650 veya menekşe mavi ışık 4200 gibi) ışığı yayan yüksek aydınlık verimliliğe sahip bir nokta ışık kaynağıdır. Uyarma işleminden sonra, numunedeki floresan maddeler farklı renklerin floresanı yayar ve daha sonra objektif lens ve mercek amplifikasyonunu gözlemler. Bu şekilde, güçlü kontrast arka planı altında, floresan bile çok zayıftır, tanıması kolaydır ve duyarlılık yüksektir. Esas olarak hücre yapısı ve fonksiyon ve kimyasal bileşim çalışması için kullanılır Bir floresan mikroskobunun ışık kaynağı doğrudan bir aydınlatma olarak değil, numunenin içindeki floresan malzemeyi uyarmak için bir enerji kaynağı olarak işlev görür. Örneği gözlemlememizin nedeni, ışık kaynağının aydınlatılması değil, uyarılmış ışık enerjisinin emiliminden sonra numunede floresan madde tarafından sunulan floresan fenomenidir. Floresan mikroskopisinin ana özelliğinin, ışık kaynağının belirli bir dalga boyu aralığında büyük miktarda uyarma ışığı sağlayabilmesidir, böylece numunedeki floresan maddeler uyarma ışığının gerekli yoğunluğunu elde edebilir. Aynı zamanda, floresan mikroskobu karşılık gelen filtre sistemine sahip olmalıdır. Floresan mikroskobu floresan mikroskopi tespiti için özel bir araçtır, bir tür ışık mikroskobudur. Optik mikroskopinin temel yapısına ve optik amplifikasyonuna ek olarak, floresan özelliklerine dayanan aşağıdaki benzersiz fonksiyonel gereksinimlere de sahiptir: (1) Floresanı heyecanlandırmak için yeterli enerji sağlayan bir ışık kaynağı. (2) Farklı maddelerin gerektirdiği uyarma spektrumuna uyum sağlamak için bir dizi renk filtresi ile, uygun uyarma spektrumu ışık kaynağından seçilir, böylece spektrum çökeltilmiş çökelti, maddenin emilim spektrumu ile çakışır, maksimum floresan. ( 3) ) Zayıf bir floresan görüntüsü elde etmek için, gerekli gözlemlenen flüoresansın görüntüleme için sisteme girmesini sağlayan bir dizi kesme renk filtresi ve yayılan ışık dalgalarının geri kalanı da oluşturulmalıdır. Işık, görüntü astarını iyileştirmek için engellenir. ( 4 ) Amplifiye edilmiş optik sistem, floresan özelliklerine uyum sağlamalı ve son olarak gözlemlenebilen ve fotoğraflanabilen yüksek parlaklık ve yüksek çözünürlüklü iyi bir floresan görüntüsü elde etmelidir. (5) Aletin güvenliği. Elektrik aletlerinin güvenliğini sağlamak için ultraviyole ışık ve cıva lambası patlamasının sızmasını önlemek için cıva lambasının uygulanması gereklidir.

Jumperlar, pire ve planthoppers gibi küçük böcekler için iğneler doğrudan yerleştirilmemeli, ancak özel yöntemler kullanılmalıdır. 1 . Çift enterpolasyon İğne boyutu 00 ince ve kısa, keskin bir ucu ve iğne kapağı olmayan. Özellikle küçük ve sert böcekleri delmek için kullanılır. Böcek gövdesi küçük forseps ile alındı ​​ve numune, düzenli iğne pozisyonuna göre mikroiğil ile dikey olarak delinmiş ve küçük bir üçgen mantar bloğu veya sert kağıda yerleştirilmiştir. Daha sonra 1 numaralı böcek iğneleri, üçgen kağıdın alt kenarına yerleştirildi ve daha sonra böcek pozisyonu üç aşamalı bir aşama ile sabitlendi. Takılan numune ve etiket, böcek iğnesinin sol tarafına yerleştirildi. 2. Solucan enterpolasyonu Karton, alt kenar uzunluğu 0.4 cm ve 1 cm yüksekliğinde küçük bir ikizkenar üçgen karta kesin. Bir böcek iğnesinin ucunu latekse batırın ve üçgen kartın ucuna hafifçe işaret edin. Sonra böcek gövdesini iğnenin ucu ile yapıştırın ve lateksin üzerine yerleştirin ve böcek gövdesini almaktan kaçınmak için iğneyi hızla çekin. Bu işlemin kilit noktası, iğnenin ucunda çok fazla lateks olmaması gerektiğidir. Yapıştırılmış numunenin dik olması gerekiyorsa, böcek ucu onu karıştırmak için kullanılabilir. Son olarak, böcek iğnesi üçgen filmin alt kenarına yerleştirilebilir ve böcek konumu üç aşamalı bir aşama ile sabitlenebilir ve etiket uzun süreli depolama için örnek kutusuna sokulabilir.

İnsanların biyoloji araştırması ile, deneysel yapıyı gözlemlemek için, deneysel gözlem için daha fazla deneysel makalenin dilimlenmesi gerekmektedir. Bu nedenle, çeşitli biyolojik ilaç deneysel kesme makineleri ortaya çıkmıştır. Dilimleme mekanizmalarının ortaya çıkışı, insanların çeşitli deneysel örnekleri işlemelerine yardımcı olmuştur. Deneysel yapının gözlemlenmesini kolaylaştırmak için, insanlar sadece test örneklerini önceden işlemekle kalmaz, aynı zamanda kalınlığı doğru bir şekilde dilimlemek gerekir. Dilimleme yöntemi, dokuyu son derece ince dilimler halinde kesmek için keskin kesme aletleri kullanmaktır. Malzeme, fiksasyon, dehidrasyon, gömme, dilimleme, boyama vb. Gibi bir dizi özel tedaviye tabi tutulmalıdır. İşlem çok karmaşıktır. Üretim sürecinde, çeşitli malzemelerin mülk gereksinimlerine göre makul bir şekilde seçilebilen bir dizi fiziksel ve kimyasal tedaviye tabi tutulması gerekir. Kesitleme işlemi hantal ve teknoloji karmaşık olsa da, hücreler arasındaki normal ilişkiyi en iyi şekilde koruyabilir ve hücrelerin orijinal görünümünü daha iyi ve daha uzun bir süre koruyabilir, bu nedenle hala ışık mikroskopisi yapmanın ana yöntemidir. Mevcut dilimleyiciler genellikle manuel dilim kullanır. Dilimlemenin stabilitesi ve doğruluğu düşüktür ve dilimleme kalınlığı tutarlı olamaz. Çalışması kolay, kullanımı esnek ve dilimlemenin stabilitesini ve doğruluğunu artırmak için uygun olan biyolojik bir dilimleyici cihazıdır. Şu anda yaygın olarak kullanılan biyolojik doku dilimleyicileri, parafin dilimleyicileri, dondurulmuş dilimleyiciler vb. Biyolojik doku dilimi yüksek doğruluğu ve stabilitesi ile ünlüdür. Bir basamak motoru ile beslenir, numune geri çekilme ve dilim sayımı fonksiyonlarına sahiptir ve numune kafasının X / Y eksenine doğru bir şekilde yerleştirilir. Dilimatörün çalışma prensibi nispeten basittir, yani dilimleyicinin keskin kesme yüzeyi kullanılarak, nesneler ve malzemeler bir noktanın oranına veya genişliğine göre parçalara ayrılır. Üretim veya farmasötik veya diğer kullanımlar için uygun olacak şekilde. Biyolojik dilimleyicinin temel amacı, bir sonraki işlemlerini kolaylaştırmak için tıbbi malzemeler, hücre dokuları ve mumlar gibi malzemeleri dilimlemektir.

1. PIN Ekleme fiksasyonu Genel olarak, zehir öldürme sonrası taze örnekler toplanır. Örnekler kuru ve sertse, solucanları sabitlemek için iğne yerleştirilmeden önce 1-2 gün boyunca bir yumuşatıcıya yerleştirilmelidir; Böcekleri yumuşatıcıdan cımbızlarla dikkatlice çıkarın ve tüm duruş aşamasına koyun, ellerle mümkün olduğunca dokunmaktan kaçının; Böcek gövdesinin büyüklüğüne göre karşılık gelen böcek iğnesini seçin, böcek iğnesini böcek gövdesinin arkasının orta çizgisinin hafif sağından yerleştirin ve karnından geçirin, genellikle iğneyi ortasında yapar iki ayak. 2. Kişinin kanatlarını yayın ve duruşunu düzeltin Kelebekler, yusufçuklar ve diğer böceklerin kanatlarını yayması gerekir. Kanatları yayarken, önce iğne ile örneği yayma plakasına dikkatlice yerleştirin, böylece böcek gövdesi oluğa düşer ve kanatlar ve yayılan plaka yatay konumda olur. Ardından, ön kanatların arka kenarını vücuda dik yapmak için kanatları forsep ile açın. Kanatlar ideal konuma ayarlandıktan sonra, bir yandan şeridi kağıdı ile kanatları bastırın ve pimi şeridi kağıdı etrafına yerleştirin, ancak kanatların içine değil, böylece şerit kağıdı ve kanat uzatma plakası kanatları düzeltmek için yakından birleştirilebilir. Kanatlarınızı yaydıktan sonra antenlerinizin, ayaklarınızın ve karnınızın konumunu ayarlayın ve işiniz biter. 3. Kurutma ve Depolama Örnek yukarıdaki eylemleri tamamladıktan sonra neredeyse bitti. Gerisi örneği kurutmaktır. Genel olarak, yaklaşık bir hafta boyunca 50 ° C'de sabit bir sıcaklık kutusunda kurutulabilir. Kurutma kutusu yoksa, kurutma için kapalı havalandırılmış bir yere de yerleştirilebilir. Kurutulduktan sonra numune numune kutusunda saklanabilir. Örnek kutusu havalandırılmış ve kuru bir yerde saklanmalıdır. Her örnek, değer verilmesi ve kullanılması gereken bir hayatı temsil eder. Örneğin, şeklini dikkatlice gözlemleyin ve diğer bilimsel araştırmaları sınıflandırmaya ve yürütmeye çalışın.

Parafin bölümü, geleneksel histolojik tekniklerde en yaygın kullanılan yöntemdir. Sadece normal hücrelerin ve dokuların morfolojik yapısını gözlemlemek için değil, aynı zamanda hücre ve dokuların morfolojik değişikliklerini incelemek, gözlemlemek ve yargılamak için patoloji, adli tıp ve diğer disiplinler tarafından kullanılan ana yöntemi de kullanılır ve yaygın olarak kullanılmaktadır. Diğer birçok disiplin ve alan. Parafin kesitleme yöntemi, malzeme ekstraksiyonu, sabitleme, yıkama ve dehidrasyon, şeffaflık, balmumu daldırma, gömme, kesitleme ve yapıştırma, dewaxing, boyama, dehidrasyon, şeffaflık ve sızdırmazlık aşamalarını içerir. Parafin bölümleri genellikle HE boyama veya IHC için kullanılır. Kalınlık daha incedir, genellikle 4um, işlem daha karmaşıktır ve numunenin kalitesi, üreticinin deneyimine daha bağlı olan farklı dokuların tipine ve bileşimine bağlıdır. En iyi deney koşullarını elde etmek için deneysel süreçte sürekli optimize edilmesi gerekir.

Sıradan biyolojik mikroskopun büyütülmesi 1000-1600 kez ulaşabilir. Genel olarak, mantar ve maya gibi mikroorganizmalar nispeten büyüktür ve düşük güçlü objektif lens ve yüksek güç objektif lens ile iyi sonuçlar elde edilebilir. Bununla birlikte, lekeli bakterilerin morfolojisini ve ökaryotik hücrelerin morfolojik yapısını görmek için bir yağ merceği kullanmak en iyisidir. Yağ lensi bir tür objektif mikroskop lensidir. Tam adı yağ lekeli objektif lens. Mikroskop objektif lens ortamı hava, su ve yağ içerir. Son ikisi yüksek çözünürlüklü objektif lens için kullanılır. Yağ aynasının doğru kullanımında ustalaşın 1. Yağ merceğini kullanırken, yağ merceğine giren ışığı arttırmak için önce cam slayt üzerine asfalt bırakın, görme alanının parlaklığını arttırın ve nesne görüntüsünü daha net hale getirin. 2. Mikroskobu masanın üzerine koyun ve asfaltın dökülmesini önlemek, gözlemi etkilemek ve masayı kirletmek için ayna kolunu sahneyi eğmek için bükmeyin. 3. Amaçlama Işık kaynağı olarak doğal ışık kullanıldığında, düzlem reflektörü kullanılmalıdır; Yapay ışık kullanılırsa, içbükey ayna kullanılmalıdır. İlk olarak, açıklığı açın ve ışığı ışık toplayıcı üzerine konsantre etmek için reflektörü döndürün. Işık toplayıcıyı yukarı ve aşağı hareket ettirebilir ve en iyi parlaklığı elde etmek için diyaframı gerektiği gibi ölçeklendirebilirsiniz. 4. Odaklama Ayarı: ① Örneği sahneye yerleştirin, numune itici ile sabitleyin ve incelemeye yönelik parçayı objektif lens altında hareket ettirin. Önce düşük güçlü bir lens ile numunenin konumunu öğrenin, daha sonra lens namlusunu kaldırın, test edilecek numuneye bir damla lens yağı bırakın ve ardından gözlem için yağ merceğini değiştirin. ② Yağ lensi yağa daldırılıncaya kadar sahneyi yavaşça yükseltmek (veya lens namlusunu yavaş yavaş indirecek) için kaba ayarlayıcıyı çevirin. Şu anda, numunenin ezilmesini ve lensin zarar görmesini önlemek için gözler yandan gözlemlenmelidir. ③ Daha sonra her iki gözü de merceklere hareket ettirin, mercekten gözlemleyin ve kaba ayarlayıcıyı yavaşça döndürün (aşamayı indirin veya lens namlusunu kaldırın). Bulanık bir nesne görüntüsü olduğunda, ince ayarlayıcıya geçin ve nesne görüntüsü netleşene kadar dönün. ④ Gözlemden sonra, önce lens namlesi yükseltilmeli ve yağ lensi numuneyi indirmeden önce bir tarafa bükülmelidir. Yağ lensi kullanıldıktan sonra, lensin üzerindeki yağ, lens silme kağıdı ile derhal silinmelidir. Lens yağı lens üzerinde kurusa, lens lens silmenin kağıdına batırılmış küçük bir ksilenle silinebilir ve daha sonra kozalanın sakız nüfuz etmesini ve çözülmesini önlemek için kuru lens kağıdı ile silinebilir. lensi sabitlemek için kullanılır ve lensin kaymasına veya düşmesine neden olur.

Kalıcı slayt örnekleri tutulabilir ve kalıcı olarak kullanılabilir. Entegre yükleme yöntemi: Bir slayt örneği yapmak için tüm küçük organizmayı veya organın bir kısmını mühürlemek için bir yöntemdir. Bu yöntem genellikle küçük gövdeli veya tek hücreli algler, filamentli algler, mantarlar, yumuşak briyofitler, protoplastlar, protoplastlar ve daha yüksek bitkilerin epidermisi, çiçek ve polen taneleri, protozoans, kanat gibi organizmalar veya organlar için geçerlidir. Antenler, Böcek Ayakları ve Civciv Embriyoları Şunlara dikkat edilecektir: (1) Slaytı tutarken, düz tutulmalı veya platforma yerleştirilmelidir. Su damlarken, sadece kapak camıyla kaplanacak su miktarı uygun olmalıdır. (2) Malzemeler, diseksiyon iğnesi veya forseps ile örtüşmeden aynı düzlemde açılmalıdır. (3) Kapak camını yerleştirirken, kabarcıkları önlemek için bir taraftan su damlasına yavaşça örtün. (4) Boyalarken, kapak camının bir tarafına bir damla boyama sıvısı koyun ve örtü camının altındaki numuneyi eşit olarak renkli yapmak için diğer taraftan emici kağıtla emin. Renklendirdikten sonra aynı yöntemi kullanın, bir damla su bırakın, boyama çözeltisini emin ve mikroskop altında gözlemleyin.

1. Farklı Bileşenler Elektron mikroskobu, lens namlu, vakum cihazı ve güç dolabı olmak üzere üç bölüme sahiptir. Optik mikroskop esas olarak dört bölümden oluşur, yani objektif lens, mercek, reflektör ve kondansatör. 2. Görüntüleme ilkesi farklıdır. Bir elektron mikroskobu, bir numuneye nüfuz etmek için bir elektron ışını kullanır ve daha sonra görüntüyü bir lensle büyütür. Optik mikroskop esas olarak numuneyi büyütmek için dışbükey lensin büyüteç görüntüleme prensibini kullanır. 3. Aydınlatma kaynağı farklıdır. Elektron mikroskobu tarafından kullanılan aydınlatma kaynağı, elektron tabancası tarafından yayılan elektron akışıdır; Optik mikroskopun aydınlatma kaynağı görünür ışıktır (güneş ışığı veya ışık). Elektron akışının dalga boyu ışık dalgasının dalga boyundan çok daha kısa olduğundan, elektron mikroskobunun büyütme ve çözünürlüğü, ışık mikroskobundan önemli ölçüde daha yüksektir. 4. lensler farklıdır. Elektron mikroskobunda büyütme için objektif lens, bir elektromanyetik lens (merkezi kısımda manyetik bir alan üretebilen halka şeklindeki elektromanyetik bobin); Bir optik mikroskobun objektif lensi, camdan yapılmış bir optik lensdir. Elektron mikroskobunda, optik lensteki kondansatör lensine, objektif lens ve mercek merceğine eşdeğer üç grup elektromanyetik lens grubu vardır. 5. Farklı Kullanımlar Yüksek çözünürlüğü nedeniyle, elektron mikroskobu, sıradan mikroskopla ayırt edilemeyen ince malzeme yapısını gözlemlemek için kullanılabilir ve malzeme bileşimini analiz etmeye yardımcı olmak için de kullanılabilir. Optik mikroskop esas olarak biyoloji ve tıpta mikroskobik materyallerin gözlemlenmesi ve öğretimde öğrenciler için deneysel bir araç olarak kullanılır.