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A amostragem de tecidos é um dos procedimentos importantes para fazer fatias. De acordo com os requisitos específicos do ensino, pesquisa científica e inspeção externa, o tecido é retirado de humanos ou animais, e a localização e o método de amostragem são determinados. Requisitos específicos são os seguintes: 1. Materiais frescos para garantir a estrutura morfológica original 2. Tamanho do bloco de tecido O volume ideal de bloco de lenços é 2.0x2.0x0.3cm, para que o fixador possa penetrar rapidamente e uniformemente no tecido 3. Não aperte o bloco de lenços de papel. A lâmina do bloco de tecido deve ser nítida. Não prenda o tecido com muita força para evitar a deformação do tecido e das células devido à extrusão. 4. padronize a posição de amostragem. A amostragem deve ser precisa de acordo com a posição anatômica e padronizada de acordo com os requisitos. 5. Selecionar a seção do bloco de tecido determina a direção de sua seção de acordo com a estrutura de cada tecido. Seções longitudinais e transversais geralmente são a chave para exibir a estrutura morfológica do tecido. 6. Mantenha o material limpo. Se houver sujeira, muco etc. no bloco de lenços de papel, ele pode ser limpo com água antes de ser colocado na solução de fixação. 7. Mantenha a forma original do tecido. Depois de consertar o tecido fresco, a maior parte do tecido diminui, às vezes até se deformam completamente. Portanto, achate o tecido para manter o protótipo o máximo possível.

Em nossa vida diária, somos expostos a todos os tipos de plantas, especialmente plantas de sementes, incluindo pinheiros, abeto, cipreste, ginkgo e todos os tipos de plantas de floração e frutificação. Para estudar sistematicamente a classificação da planta, podemos usar amostras de plantas. As amostras de plantas podem ser divididas nas seguintes categorias de acordo com o objetivo de uso (1) Amostra filogenética: O objetivo da preparação é observar e estudar a história da vida de uma planta, ou seja, o crescimento de uma planta em cada estágio, desde a germinação de sementes até o crescimento, desenvolvimento, floração e frutificação. É comumente usado no ensino biológico, introdução, cultivo e pesquisa científica. (2) Amostra inteira: geralmente usada para identificar plantas, nomes científicos e medicamentos à base de plantas chineses. Este espécime também é usado para pesquisa de vegetação em uma área. Por exemplo, investigue os recursos da planta de uma escola ou montanha. As raízes, caules, folhas e outros órgãos vegetativos de plantas superiores são uma das bases para identificar plantas, mas geralmente são diferentes devido a diferentes ambientes de crescimento. As flores e frutas têm hereditariedade relativamente estável, que podem refletir melhor as características inerentes das plantas, e são uma base importante para identificar e identificar plantas. Ao coletar espécimes, tente coletar amostras com raízes completas, caules, folhas, flores e frutas. As ervas também devem ser desenterradas no subsolo. A forma e o arranjo de esporângios, rizoma, escalas e indumentum são importantes características taxonômicas das samambaias, que devem receber atenção ao coletar. Toda a amostra é frequentemente transformada em amostra de folhas de cera e amostra de imersão em cores primárias. (3) Amostra anatômica: O objetivo da preparação é observar e estudar a estrutura organizacional interna de um órgão vegetal. Por exemplo, dissecar o bulbo da cebola para observar a estrutura da placa de base, broto, folha de escala, raiz fibrosa, etc. A placentação da membrana lateral e a posição do rolamento de sementes dos pepinos foram observados por dissecção transversal; A flor de pêssego foi dissecada longitudinalmente para observar suas várias partes e morfologia. Para coletar esse tipo de amostra, você só precisa selecionar um órgão saudável e representativo, em vez de coletar toda a filial. As amostras anatômicas geralmente são transformadas em amostras impregnadas anti -sépticas. (4) Amostra de comparação: A amostra de comparação é usada principalmente para comparar as semelhanças e diferenças de um órgão de diferentes plantas. Por exemplo, para comparar a morfologia das sementes de dicotiledôneas e monocotiledôneos, é necessário coletar os frutos maduros de estupro, soja, pepino, tomate etc., remover a casca, secar as sementes e também coletar os frutos do trigo, Rice Rice e milho para comparação. A amostra de comparação pode ser transformada em amostra de folhas de cera ou amostra seca de ar, e a fruta embebida com a cor primária é melhor.

A manutenção adequada do microscópio pode prolongar a vida útil do microscópio. Hoje, explicarei como limpar o vidro óptico. Existem dois tipos de limpeza de superfície de vidro: superfície de limpeza de nível atômico e superfície de limpeza da tecnologia de processos. A limpeza do nível atômico é necessária para aplicações científicas especiais, pois precisa ser realizada sob condições de ultra -vácuo. Geralmente, apenas a superfície limpa na tecnologia de processo é necessária para atender aos requisitos para o processamento do produto. O vidro óptico é usado para lentes, prismas, lentes, etc. de instrumentos. Na fabricação e uso, é fácil obter sujeira oleosa, sujeira molhada, impressões digitais etc., que afeta a imagem e a transmitância de luz. Para limpar o vidro óptico, diferentes agentes de limpeza, ferramentas e métodos devem ser selecionados de acordo com as características e a estrutura da sujeira. Limpe a lente revestida com filme anti -reflexão, como câmera, projetor de slides e lente de microscópio, e use cerca de 20% de álcool e 80% de éter como agente de limpeza. Ao limpar, use uma escova macia ou uma bola de algodão mergulhada com uma pequena quantidade de agente de limpeza para fazer um movimento circular do centro da lente para fora. Não mergulhe essas lentes no agente de limpeza para limpeza e não as limpe com força ao limpá -las, caso contrário, o filme anti -reflexão será danificado e a lente será danificada. Existem muitos métodos para limpar a superfície do vidro, e um deles pode ser selecionado ou combinado de acordo com o grau original da poluição da superfície do vidro, o processo subsequente de tratamento da superfície de vidro e o objetivo do produto final. A névoa de óleo, a névoa úmida da água e a névoa mista de água no vidro óptico também podem ser limpas usando o agente de limpeza, e o método de limpeza é semelhante ao da lente. O mofo na superfície do vidro óptico é um fenômeno comum. Quando o vidro óptico é mofado, a luz se espalha em sua superfície, deixando a imagem embaçada e, em casos graves, o instrumento será descartado. A razão para o oídio do vidro óptico é que existem esporos microbianos em sua superfície. Quando a temperatura e a umidade são apropriadas e os "nutrientes" são necessários, ela cresce rapidamente e formará pontos de mofo. É particularmente importante fazer o vidro óptico anti -mofo e anti -incrustando. Uma vez que o mofo ocorre, ele deve ser limpo imediatamente. Preste atenção à secura.

A amostra de imersão da planta é armazenar materiais vegetais frescos na solução preparada por produtos químicos, para que a cor e a forma originais das plantas possam ser observadas. A amostra de imersão da planta tem um bom efeito de preservação e um longo tempo de preservação, restaurando a cor brilhante das plantas. Tem muitas vantagens e fornece uma base científica essencial para a pesquisa de plantas. Como o espécime de imersão mantém a cor original das plantas? A razão pela qual as plantas são verdes é que os cloroplastos das plantas contêm clorofila. A clorofila é um composto orgânico complexo. Há um átomo de magnésio metálico no centro de sua estrutura molecular. A razão pela qual a clorofila é verde é que ela contém a estrutura central do átomo de magnésio. Se você deseja manter o verde original nas plantas, precisará substituir os íons magnésio na clorofila por íons de cobre. Seu método é usar ácido para separar o magnésio das moléculas de clorofila. Neste momento, como a clorofila não possui magnésio, a planta fica marrom. Em seguida, substitua o magnésio do núcleo da molécula de clorofila por cobre. A estrutura da molécula de clorofila com átomo de cobre como núcleo é muito estável, não é fácil de decompor e destruir e não é solúvel em álcool ou formalina. Portanto, amostras de plantas tratadas dessa maneira podem ser preservadas em verde por um longo tempo na solução de preservação.

A amostra de folhas de cera, também conhecida como amostra pressionada, é o tipo mais comum de amostra de plantas. É crucial identificar corretamente as espécies de plantas para criar espécimes que possam manter as características morfológicas naturais e verdadeiras das plantas. A vantagem das amostras de folhas de cera é que elas podem ser preservadas por um longo tempo. A coleção de amostras de folhas de cera com uma longa história no mundo pode até ser rastreada até o século XVI. No entanto, a amostra de folhas de cera feita por esse método tradicional desapareceu devido à destruição de clorofila e antocianinas na planta. Além disso, como a amostra de folhas de cera usa o processo de prensagem, o produto final apresenta um estado plano que foi desbotado em amarelo marrom e fixado no papel de mesa, que não é dominante do ponto de vista estético. O processo de supressão é a chave para combinar as características ecológicas originais das plantas com a beleza artística. O efeito premente no local é o melhor depois de coletar o espécime, mas a operação real é demorada e intensiva em mão-de-obra, o que é difícil. Portanto, a planta pode ser colocada no saco plástico de vedação. Para evitar a deformação da extrusão, é necessário inflar a correia, marque as informações de coleta correspondentes e trazê -las de volta para pressionar após a vedação. Para plantas finas e vulneráveis ​​à perda de água, elas devem ser suprimidas no local para descrever com precisão as características da planta. Ao colocar as plantas na pasta da amostra, tente espalhar as raízes, galhos, folhas, flores e frutas e entregue -as parcialmente para entender melhor as características das amostras.

O uso de espécimes biológicos é diverso e desempenha um papel importante na pesquisa científica e no ensino biológico. Além disso, eles também são de grande valor em desenho, exposição, visualização etc. Para pesquisas científicas, as amostras biológicas podem fornecer objetos e dados diretos, confiáveis, precisos e intuitivos para pesquisas científicas, o que é de grande importância para o estudo das leis de vida, crescimento e desenvolvimento de animais e plantas. Por exemplo, quando os taxonomistas vegetais classificam sistematicamente várias plantas, eles devem tomar amostras de plantas como a base principal, analisar as diferenças de objetos de pesquisa em raiz, tronco, folha, flor, frutas, sementes e outros aspectos através dos padrões da planta, de modo a corretamente julgar suas características, de modo a identificar com precisão cada planta. No ensino, as amostras biológicas podem tornar o conhecimento explicado pelos professores mais intuitivamente exibidos, aprofundando a compreensão e a cognição dos alunos. Por exemplo, ao visitar o Museu Animal e Planta, podemos ver muitos espécimes preciosos de animais e plantas. A exposição dessas amostras biológicas fornece à maioria dos jovens as condições para aprender conhecimento biológico, melhora seu interesse na aprendizagem e também aprimora a compreensão do público sobre a natureza e estabelece um conceito correto de proteção animal e planta. As amostras biológicas são os registros permanentes mais valiosos no patrimônio natural humano e desempenham um papel insubstituível na pesquisa científica, popularização do conhecimento científico e vida diária humana. Com o desenvolvimento da época, os seres humanos fizeram uma transição no uso de recursos naturais, e o meio ambiente se deteriorou gradualmente hoje. Preservar espécies biológicas na forma de amostras também é de grande importância para pesquisas futuras sobre o curso do desenvolvimento e a evolução biológicas.

Na classe experimental, todos usamos slides biológicos e sabemos que os slides biológicos podem nos ajudar a estudar e pesquisar melhor, mas existem inevitavelmente alguns problemas no processo de fabricação de slides biológicos. Agora, vamos entender quais problemas ocorrerão no processo de fabricação de slides biológicos. 1. Desidratação, transparência, tempo de imersão de cera muito longo e temperatura muito alta podem causar fragilidade tecidual. Além disso, a textura do próprio tecido também pode causar fragilidade tecidual. Você pode tentar cortar enquanto sopra o ar até a fatia de cera, que pode ser aliviada. 2. A faca não é afiada, o ângulo da faca é muito grande e a lâmina de vidro é muito grossa, o que pode fazer com que a lâmina de vidro ronra. 3. Se a lâmina for irregular, a faca de slide não será reta e a faca de slide não é paralela ao bloco de cera, a cera pode ser dobrada. 4. Se a faca não estiver presa com a base da faca e o bloco de cera, a espessura será desigual se o tecido for muito duro e o eixo da máquina de slides estiver muito à frente ou a máquina de slide foi usada. 5. As rachaduras na lâmina de vidro podem ser causadas pela lacuna da faca, impurezas na parafina, calcificação, fragmentos ósseos ou nós com fio no tecido ou fibras de papel de algodão. . Ainda existem muitos problemas na operação real. Se você estiver interessado nesse aspecto, pode nos seguir para obter mais informações.

(1) A qualidade dos materiais afetará diretamente a qualidade das fatias. Ao tomar materiais, os médicos devem ter uma faca de material nítido mais cedo, para evitar arrastar a faca material para frente e para trás, e é melhor cortar paralelo com a fibra o máximo possível ao tomar materiais; (2) A fixação faz parte do trabalho da sala técnica e também uma parte irremediável de todo o processo de produção. A fixação é impedir que as células do tecido da autólise e da corrupção evitem a decomposição das proteínas por enzimas nas células e mantenha sua estrutura original semelhante à vida (3) A lavagem da água após a fixação é geralmente ignorada por muitas pessoas, e a lavagem incompleta é fácil de causar uma cor pobre da placa de apoio e do tingimento; (4) A desidratação deve usar um desidratador para substituir a água no tecido, que é propício à penetração de solventes orgânicos. Se a desidratação está completa ou não está diretamente relacionada a se o tecido pode ser totalmente transparente e a desidratação excessiva é fácil de causar tecido quebradiço; (5) Se você quiser cortar bem uma fatia, deve ter uma faca de fatia aguda mais cedo. A trituração da faca é uma tecnologia relativamente básica para fatiar técnicos. A qualidade da moagem da faca está diretamente relacionada à qualidade da fatia; (6) O tempo de tingimento deve ser determinado de acordo com o combustível antigo e novo, a temperatura e o tipo de chips. Os chips podem ser azuis com água morna ou água da torneira e lavados totalmente para evitar o desbotamento causado por resíduos de ácido clorídrico; (7) A gengiva na folha de cobertura não deve ser muito fina. Ao selar a folha, a gengiva deve ser preenchida uniformemente com a folha de cobertura e a goma não deve transbordar. O tecido deve ser completamente coberto sem bolhas e rotulado. O rótulo deve ser colado no lado esquerdo ou direito do slide. O número pode ser impresso somente depois de ser escrito claramente

Através de pequenas fatias biológicas, podemos entender as características biológicas. A fatia de ensino biológico tem um valor importante no ensino biológico e desempenha um papel como uma ferramenta de ensino intuitiva. A seção de parafina também é chamada de seção permanente, que é principalmente adequada para a seção de vários tecidos vegetais. A espessura da seção é fácil de controlar, a clareza é boa e pode ser transformada em seções contínuas, que são fáceis de preservar por um longo tempo. O fabricante de fatias de parafina informa como preservar as fatias de parafina da planta. Coloque o material de observação em um fixador específico o mais rápido possível, mate suas células rapidamente e tente mantê -lo em seu estado natural de vida. Depois que o material é corrigido, ele precisa ser preservado para uso. Nesse processo, é necessária a estrutura do material para não mudar. O solvente de preservação comumente usado é de 70% da solução de álcool, o que pode impedir que os materiais comuns fiquem ruins por um longo tempo. Também é necessário que seja armazenado na geladeira. Uso da concentração de álcool: consertar plantas fracas e com tenros com baixa concentração de álcool, como 50%; Use álcool a 70% para consertar materiais mais antigos ou mais difíceis. Se os materiais embrionários da planta forem fixos, a fórmula poderá ser modificada para 50% de álcool 89ml+ácido acético glacial 5ml+formaldeído 40% para armazenamento Os quatro lados da fatia de tecido biológico são fixos sem encolhimento e deformação, e a superfície lisa do acrílico em ambos os lados protege os dois lados da fatia fixa, o que é conveniente para observar a estrutura interna do tecido biológico.

O microscópio de fluorescência é uma ferramenta básica de citoquímica de imunofluorescência. É composto de fonte de luz, sistema de placa de filtro, sistema óptico e outros componentes principais. Observe com o microscópio óptico comum. As amostras de slides são geralmente coradas com hematoxilina eosina, às vezes com coloração especial. Primeiro de tudo, o microscópio óptico deve manter o estado natural dos materiais biológicos, na medida do possível, para evitar artefatos, deformação e distorção; portanto, os materiais biológicos devem ser fixados; O filme deve ser fino e transparente antes que possa ser fotografado sob o microscópio óptico. Além de cortar o material em fatias finas ou dispersá -lo por prensagem de luz ou outros meios, outros métodos devem ser usados ​​para torná -lo transparente e tingido, de modo a observar melhor os detalhes da estrutura. De fato, todos os materiais biológicos podem obter amostras que atendem aos requisitos de espessura e transparência por meio de incorporação de parafina, corte (ou manchas), adesão, dissolução de cera, transparência e outros processos e, em seguida, obtém um certo grau de contraste através de procedimentos de tingimento. A fatia biológica é frequentemente colada na lâmina de vidro com um tamanho padrão de 26x76 mm e uma espessura de 1,1 ^ - 1,3 mm. Os dois lados da lâmina de vidro devem ser planos paralelos. O requisito para a espessura da lâmina de vidro não é muito rigoroso, mas quando sua espessura excede a distância de trabalho livre de alguns colecionadores com maior grau de correção, a espessura da lâmina de vidro se torna importante para focar a fonte de luz e formar a imagem da imagem do Parada de campo no plano do objeto. Nesse caso, uma lâmina de vidro com uma espessura de 0,9 ^ - 1,0 mm é apropriada.

O microscópio de fluorescência é uma fonte de luz pontual com alta eficiência luminosa, que emite luz de um certo comprimento de onda (como luz ultravioleta 3650 ou luz azul violeta 4200) como luz de excitação através do sistema de cores do filtro. Após a excitação, as substâncias fluorescentes na amostra emitem fluorescência de cores diferentes e depois observam através da amplificação da lente objetiva e da ocular. Dessa maneira, sob o forte fundo de contraste, mesmo a fluorescência é muito fraca, é fácil reconhecer e a sensibilidade é alta. É usado principalmente para o estudo da estrutura e função celular e composição química A fonte de luz de um microscópio de fluorescência não atua como uma iluminação direta, mas como uma fonte de energia para estimular o material fluorescente dentro da amostra. A razão pela qual podemos observar a amostra não é a iluminação da fonte de luz, mas o fenômeno de fluorescência apresentado pela substância fluorescente na amostra após a absorção da energia da luz excitada. Pode -se observar que a principal característica da microscopia de fluorescência é que sua fonte de luz pode fornecer uma grande quantidade de luz de excitação em uma faixa específica de comprimento de onda, para que as substâncias fluorescentes na amostra possam obter a intensidade necessária da luz de excitação. Ao mesmo tempo, o microscópio de fluorescência deve ter o sistema de filtro correspondente. O microscópio de fluorescência é uma ferramenta especial para detecção de microscopia de fluorescência, é um tipo de microscópio leve. Além da estrutura básica e da amplificação óptica da microscopia óptica, também possui os seguintes requisitos funcionais exclusivos com base nas características de fluorescência: (1) Uma fonte de luz que fornece energia suficiente para excitar a fluorescência. (2) Com um conjunto de filtros de cores para se adaptar ao espectro de excitação exigido por diferentes substâncias, o espectro de excitação apropriado é selecionado a partir da fonte de luz, de modo que o espectro precipitado coincide com o espectro de absorção da substância, a fim de obter o Fluorescência máxima. ( 3) ) Para obter uma imagem de fluorescência fraca, também deve ser estabelecido um conjunto de filtro de cor de corte, o que faz com que a fluorescência observada necessária entre no sistema de imagem, e o restante das ondas de luz, incluindo o emitido Luz, são bloqueados para melhorar o revestimento da imagem. ( 4 ) O sistema óptico amplificado deve se adaptar às características da fluorescência e, finalmente, obter uma boa imagem de fluorescência com alto brilho e alta resolução que podem ser observados e fotografados. (5) Segurança do instrumento. A aplicação da lâmpada de mercúrio é necessária para impedir o vazamento de luz ultravioleta e explosão da lâmpada de mercúrio, para garantir a segurança dos aparelhos elétricos.

Para pequenos insetos como jumpers, pulgas e planos, as agulhas não devem ser inseridas diretamente, mas métodos especiais devem ser usados. 1 . Interpolação dupla O tamanho da agulha 00 é fino e curto, com uma ponta afiada e sem tampa da agulha. É especialmente usado para perfurar insetos pequenos e duros. O corpo do inseto foi recolhido com pequenas pinças, e a amostra foi perfurada verticalmente com microneedle de acordo com a posição regular da agulha e inserida em um pequeno bloco de cortiça triangular ou papel duro. Em seguida, as agulhas de insetos acima do número 1 foram inseridas perto da borda inferior do papel triangular e, em seguida, a posição do inseto foi fixada com um estágio de três estágios. A amostra e a etiqueta inseridos estavam localizados no lado esquerdo da agulha de insetos. 2. Interpolação de vermes Corte o papelão em um pequeno cartão triangular isósceles com comprimento da borda inferior de 0,4 cm e altura de 1 cm. Mergulhe a ponta de uma agulha de insetos no látex e aponte suavemente na ponta da carta triangular. Em seguida, cole o corpo do inseto com a ponta da agulha e coloque -a no látex e retire rapidamente a agulha para evitar pegar o corpo do inseto. O ponto principal desta operação é que não deve haver muito látex na ponta da agulha. Se a amostra colada precisar estar na vertical, a ponta do inseto poderá ser usada para agitar. Finalmente, a agulha de insetos pode ser inserida perto da borda inferior do filme do triângulo, e a posição do inseto pode ser fixada com um estágio de três estágios, e o rótulo pode ser inserido na caixa de amostras para armazenamento a longo prazo.

Com a pesquisa das pessoas sobre biologia, a fim de observar a estrutura experimental, mais e mais artigos experimentais precisam ser fatiados para observação experimental. Portanto, várias máquinas de corte experimentais de medicamentos biológicos surgiram. O surgimento de mecanismos de corte ajudou as pessoas a processar várias amostras experimentais. Para facilitar a observação da estrutura experimental, as pessoas precisam não apenas para pré -processar as amostras de teste, mas também para cortar com precisão a espessura. O método de corte é usar ferramentas de corte nítidas para cortar o tecido em fatias extremamente finas. O material deve passar por uma série de tratamentos especiais, como fixação, desidratação, incorporação, corte, tingimento etc. O processo é muito complicado. No processo de produção, ele também precisa passar por uma série de tratamentos físicos e químicos, que podem ser razoavelmente selecionados de acordo com os requisitos de propriedade de vários materiais. Embora o processo de corte seja complicado e a tecnologia seja complexa, ela pode melhor manter a relação normal entre as células e preservar a aparência original das células por um tempo melhor e mais longo, por isso ainda é o principal método de fabricar microscopia leve. Os slicers existentes geralmente usam fatia manual. A estabilidade e a precisão do fatiamento são baixas e a espessura do fatiamento não pode ser consistente. É um dispositivo slicer biológico que é fácil de operar, flexível de usar e conveniente para melhorar a estabilidade e a precisão do fatiamento. Atualmente, existem fatores de tecidos biológicos comumente usados, fatores de parafina, fatores congelados e assim por diante. O fator de tecido biológico é famoso por sua alta precisão e estabilidade. É alimentado por um motor de trampolim, possui as funções de retração e contagem de fatias de amostra e está posicionada com precisão no eixo X / Y da cabeça da amostra. O princípio de funcionamento do fatador é relativamente simples, isto é, usando a superfície de corte nítida do fatador, objetos e materiais são cortados em pedaços de acordo com a proporção ou largura de um ponto. Para ser adequado para produção ou uso farmacêutico ou outros. O principal objetivo do fator biológico é cortar materiais como materiais medicinais, tecidos celulares e ceras, de modo a facilitar seu próximo processo.

1. Fixação de inserção do PIN Geralmente, espécimes frescos após a morte de venenos são coletados. Se as amostras estiverem secas e duras, elas devem ser colocadas em um amaciador por 1-2 dias antes da inserção da agulha para fixar os vermes; Retire cuidadosamente os insetos do amaciante com pinças e coloque -os em todo o estágio da postura, evitando tocar com as mãos o máximo possível; Selecione a agulha de insetos correspondente de acordo com o tamanho do corpo do inseto, insira a agulha de insetos da ligeiramente direita da linha média da parte traseira do corpo do inseto e passa -a do abdômen, geralmente fazendo a agulha no meio do dois pés. 2. Espalhe as asas e endireite a postura de alguém Borboletas, libélulas e outros insetos precisam espalhar suas asas. Ao espalhar asas, primeiro insira a amostra com a agulha na placa de espalhamento com cuidado, para que o corpo do inseto caia na ranhura, e as asas e a placa de espalhamento estejam em uma posição horizontal. Em seguida, desdobre as asas com fórceps para fazer a borda traseira das asas da frente perpendicularmente ao corpo. Depois que as asas são ajustadas para a posição ideal, pressione as asas com o papel de tira em uma mão e insira o alfinete ao redor do papel da tira na outra mão, mas não nas asas, de modo que o papel da tira e a placa de extensão da asa pode ser combinado de perto para consertar as asas. Depois de espalhar as asas, ajuste a posição de suas antenas, pés e abdômen, e você terminará. 3. Secagem e armazenamento Depois que a amostra concluir as ações acima, está quase concluído. O resto é secar a amostra. Geralmente, pode ser seco em uma caixa de temperatura constante a 50 ° C por cerca de uma semana. Se não houver caixa de secagem, ela também poderá ser colocada em um local ventilado interno para secagem. Após a secagem, a amostra pode ser armazenada na caixa de amostras. A caixa da amostra deve ser armazenada em um local ventilado e seco. Cada amostra representa uma vida, que deve ser estimada e utilizada. Por exemplo, observe cuidadosamente sua forma e tente classificar e conduzir outras pesquisas científicas.

A seção de parafina é o método mais amplamente utilizado nas técnicas histológicas convencionais. Não é usado apenas para observar a estrutura morfológica das células e tecidos normais, mas também o principal método usado pela patologia, medicina forense e outras disciplinas para estudar, observar e julgar as mudanças morfológicas de células e tecidos, e tem sido amplamente utilizado em Muitas outras disciplinas e campos. O método de corte de parafina inclui as etapas de extração de material, fixação, lavagem e desidratação, transparência, imersão em cera, incorporação, corte e colagem, deswax, tingimento, desidratação, transparência e vedação. As seções de parafina geralmente são usadas para a mancha ou o IHC. A espessura é mais fina, geralmente 4um, o processo é mais complexo e a qualidade da amostra depende do tipo e da composição de diferentes tecidos, o que depende mais da experiência do fabricante. Ele precisa ser constantemente otimizado no processo experimental para obter as melhores condições experimentais.

A ampliação do microscópio biológico comum pode atingir 1000-1600 vezes. Geralmente, microorganismos como fungos e leveduras são relativamente grandes, e bons resultados podem ser obtidos com lente objetiva de baixa potência e lente objetiva de alta potência. No entanto, para ver a morfologia de bactérias coradas e a estrutura morfológica das células eucarióticas, é melhor usar uma lente de óleo. A lente de óleo é um tipo de lente objetiva do microscópio. O nome completo é lente objetiva manchada de óleo. O meio da lente objetivo do microscópio inclui ar, água e óleo. Os dois últimos são usados ​​para lentes objetivas de alta resolução. Dominar o uso correto do espelho de óleo 1. Ao usar a lente de óleo, primeiro gota asfalto na lâmina de vidro para aumentar a luz que entra na lente de óleo, aumenta o brilho do campo visual e tornar a imagem do objeto mais clara. 2. Coloque o microscópio na vertical na mesa e não dobre o braço do espelho para inclinar o palco, de modo a evitar o derramamento de asfalto, afetando a observação e poluindo a mesa. 3. mirar Quando a luz natural é usada como fonte de luz, o refletor plano deve ser usado; Se a luz artificial for usada, o espelho côncavo deve ser usado. Primeiro, abra a abertura e gire o refletor para concentrar a luz no coletor da luz. Você pode mover o coletor de luz para cima e para baixo e escalar a abertura conforme necessário para obter o melhor brilho. 4. Ajuste do foco: ① Coloque a amostra no palco, conserte -a com o empurrador de amostras e mova a peça a ser examinada sob a lente objetiva. Primeiro, descubra a posição da amostra com uma lente de baixa potência, depois levante o barril da lente, gota uma gota de óleo de lente na amostra a ser testada e depois altere a lente de óleo para a observação. ② Gire o ajustador grosso para aumentar lentamente o palco (ou diminuir gradualmente o barril da lente) até que a lente de óleo esteja imersa no óleo. Nesse momento, os olhos devem ser observados do lado para evitar esmagar a amostra e danificar a lente. ③ Em seguida, mova os dois olhos para a ocular, observe da ocular e gire lentamente o ajustador grosso (abaixe o estágio ou aumente o cano da lente) na direção oposta. Quando houver uma imagem de objeto embaçado, altere para o ajustador fino e gire até que a imagem do objeto fique clara. ④ Após a observação, o cano da lente deve ser levantado primeiro e a lente de óleo deve ser torcida para um lado antes de derrubar a amostra. Depois que a lente de óleo for usada, o óleo na lente deve ser eliminado imediatamente com o papel de limpeza da lente. Se o óleo da lente estiver seco na lente, a lente poderá ser limpa com um pouco de xileno mergulhado no papel de limpeza da lente e, em seguida, o xileno residual pode ser limpo com o papel da lente seca para impedir que o xileno penetra e dissolvesse a goma usado para consertar a lente, fazendo com que a lente mude ou caia.

As amostras de slides permanentes podem ser mantidas e usadas permanentemente. Método de carregamento integral: É um método selar todo o minúsculo organismo ou parte do órgão para criar uma amostra de slides. This method is generally applicable to organisms or organs with small body or a thin body, such as unicellular algae, filamentous algae, fungi, soft bryophytes, protoplasts and sporangia of ferns, epidermis of higher plants, florets and pollen grains, protozoans, wings, antenas, pés de insetos e embriões de pintinhos Atenção deve ser dada a: (1) Ao segurar o slide, ele deve ser mantido plano ou colocado na plataforma. Ao pingar a água, a quantidade de água deve ser apropriada, de modo a ser coberta pelo vidro da capa. (2) Os materiais devem ser desdobrados no mesmo plano sem sobrepor à dissecação de agulha ou fórceps. (3) Ao colocar o vidro da tampa, cubra -o lentamente na gota de água de um lado para evitar bolhas. (4) Ao tingir, coloque uma gota de líquido de manchas em um lado do vidro da tampa e sugue -o do outro lado com papel absorvente para fazer a amostra sob o vidro de tampa uniformemente. Após a coloração, use o mesmo método, gota uma gota de água, sugue a solução de coloração e observe -a sob o microscópio.

1. Componentes diferentes O microscópio eletrônico possui três partes, a saber, o barril da lente, o dispositivo a vácuo e o gabinete elétrico. O microscópio óptico é composto principalmente por quatro partes, a saber, lente objetiva, ocular, refletor e condensador. 2. O princípio da imagem é diferente. Um microscópio eletrônico usa um feixe de elétrons para penetrar em uma amostra e, em seguida, amplia a imagem por uma lente. O microscópio óptico usa principalmente o princípio de imagem de ampliação da lente convexa para ampliar a amostra. 3. A fonte de iluminação é diferente. A fonte de iluminação usada pelo microscópio eletrônico é o fluxo de elétrons emitido pela pistola de elétrons; A fonte de iluminação do microscópio óptico é a luz visível (luz solar ou luz). Como o comprimento de onda do fluxo de elétrons é muito menor que o comprimento de onda da onda de luz, a ampliação e a resolução do microscópio eletrônico são significativamente maiores que as do microscópio leve. 4. As lentes são diferentes. A lente objetiva para ampliar o microscópio eletrônico é uma lente eletromagnética (uma bobina eletromagnética em forma de anel que pode gerar um campo magnético na parte central); A lente objetiva de um microscópio óptico é uma lente óptica feita de vidro. Existem três grupos de lentes eletromagnéticas no microscópio eletrônico, que são equivalentes à lente do condensador, lente objetiva e lente ocular na lente óptica. 5. usos diferentes Devido à sua alta resolução, o microscópio eletrônico pode ser usado para observar a estrutura do material fino que não pode ser distinguido pelo microscópio comum e também pode ser usado para ajudar a analisar a composição do material. O microscópio óptico é usado principalmente para a observação de materiais microscópicos em biologia e medicina e como uma ferramenta experimental para os alunos no ensino.