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조직 샘플링은 슬라이스를 만드는 중요한 절차 중 하나입니다. 교육, 과학 연구 및 외부 검사의 특정 요구 사항에 따라 조직은 인간이나 동물로부터 가져 오며 샘플링의 위치와 방법이 결정됩니다. 특정 요구 사항은 다음과 같습니다. 1. 원래 형태 학적 구조를 보장하기위한 신선한 재료 2. 조직 블록의 크기 조직 블록의 이상적인 부피는 2.0x2.0x0.3cm이므로 고정 장치가 조직에 빠르고 균등하게 침투 할 수 있습니다. 3. 조직 블록을 짜지 마십시오. 조직 블록의 날은 날카 롭습니다. 압출로 인한 조직과 세포의 변형을 피하기 위해 조직을 너무 단단히 고정하지 마십시오. 4. 샘플링 위치를 표준화합니다. 샘플링은 해부학 적 위치에 따라 정확하고 요구 사항에 따라 표준화해야합니다. 5. 조직 블록의 섹션을 선택하면 각 조직의 구조에 따라 섹션의 방향을 결정합니다. 종 방향 및 가로 섹션은 종종 조직의 형태 학적 구조를 나타내는 열쇠입니다. 6. 재료를 깨끗하게 유지하십시오. 조직 블록에 먼지, 점액 등이있는 경우 고정 용액에 넣기 전에 물로 청소할 수 있습니다. 7. 조직의 원래 모양을 유지하십시오. 신선한 조직을 고정 한 후, 대부분의 조직은 축소되며 때로는 완전히 변형됩니다. 따라서 조직을 평평하게하여 프로토 타입을 가능한 한 많이 유지하십시오.

우리의 일상 생활에서, 우리는 모든 종류의 식물, 특히 소나무, 전나무, 사이프러스, 진고 및 모든 종류의 개화 및 열매 식물을 포함한 종자 식물에 노출됩니다. 식물 분류를 체계적으로 연구하기 위해 식물 표본을 사용할 수 있습니다. 식물 표본은 사용 목적에 따라 다음 범주로 나눌 수 있습니다. (1) 계통 발생 표본 : 준비의 목적은 식물의 생명력, 즉 종자 발아에서 성장, 발달, 개화 및 결실에 이르기까지 각 단계에서 식물의 성장을 관찰하고 연구하는 것입니다. 그것은 일반적으로 생물학적 교육, 소개, 재배 및 과학 연구에 사용됩니다. (2) 전체 표본 : 일반적으로 식물, 과학적 이름 및 중국 허브 의약품을 식별하는 데 사용됩니다. 이 표본은 한 지역의 식생 조사에도 사용됩니다. 예를 들어, 학교 나 산의 식물 자원을 조사하십시오. 더 높은 식물의 뿌리, 줄기, 잎 및 기타 식물성 기관은 식물을 식별하기위한 기초 중 하나이지만, 다른 성장 환경으로 인해 종종 다릅니다. 꽃과 과일은 상대적으로 안정적 인 유전성을 가지고 있으며, 이는 식물의 고유 한 특성을 가장 잘 반영 할 수 있으며 식물을 식별하고 식별하는 데 중요한 기초입니다. 표본을 수집 할 때 완전한 뿌리, 줄기, 잎, 꽃 및 과일로 표본을 수집하십시오. 허브는 또한 지하를 파헤쳐 야합니다. 포자, 뿌리 줄기, 스케일 및 인멘텀의 모양과 배열은 양치류의 중요한 분류 학적 특성이며, 수집 할 때주의를 기울여야합니다. 전체 시편은 종종 왁스 잎 시편과 1 차 색상 침수 시편으로 만들어집니다. (3) 해부학 표본 : 준비의 목적은 식물 기관의 내부 조직 구조를 관찰하고 연구하는 것입니다. 예를 들어, 양파 전구를 해부하여베이스 플레이트, 새싹, 스케일 잎, 섬유 뿌리 등의 구조를 관찰합니다. 오이의 측면 막 태반 및 종자 베어링 위치는 가로 해부에 의해 관찰되었습니다. 복숭아 꽃은 다양한 부분과 형태를 관찰하기 위해 종 방향으로 해부되었다. 이런 종류의 표본을 수집하려면 전체 지점을 수집하는 대신 건강하고 대표적인 기관 만 선택하면됩니다. 해부학 적 표본은 일반적으로 방부제 함침 표본으로 만들어집니다. (4) 비교 시편 : 비교 시편은 주로 다른 식물의 기관의 유사성과 차이를 비교하는 데 주로 사용됩니다. 예를 들어, dicotyledons와 monocotyledons의 종자 형태를 비교하려면 강간, 콩, 오이, 토마토 등의 성숙한 과일을 수집하고 껍질을 제거하고 씨앗을 말리고 밀의 과일을 모으십시오. 비교를위한 옥수수. 비교 시편은 왁스 잎 시편 또는 공기 건조 시편으로 만들 수 있으며, 1 차 색상으로 담긴 과일이 더 좋습니다.

현미경의 적절한 유지는 현미경의 서비스 수명을 연장 할 수 있습니다. 오늘은 광학 유리를 청소하는 방법을 설명하겠습니다. 유리 표면 세척에는 두 가지 유형의 유리 표면 세척이 있습니다 : 원자 수준 세정 표면 및 공정 기술 세정 표면. 원자 수준의 청소는 초저 진공 조건 하에서 수행해야하기 때문에 특수 과학 응용 분야에 필요합니다. 일반적으로 제품 처리 요구 사항을 충족하려면 프로세스 기술의 깨끗한 표면 만 필요합니다. 광학 유리는 렌즈, 프리즘, 렌즈 등 기기에 사용됩니다. 제조 및 사용에서는 기름기가 많은 먼지, 물 젖은 흙, 지문 등을 쉽게 얻을 수 있으며, 이는 이미징 및 가벼운 투과율에 영향을 미칩니다. 광학 유리를 청소하려면 먼지의 특성과 구조에 따라 다른 세척제, 도구 및 방법을 선택해야합니다. 카메라, 슬라이드 프로젝터 및 현미경 렌즈와 같은 반사막으로 코팅 된 렌즈를 청소하고 약 20% 알코올 및 80% 에테르를 세척제로 사용하십시오. 청소할 때는 소량의 청소제가 담긴 부드러운 브러시 또는 면봉을 사용하여 렌즈 중앙에서 원형 움직임을 만듭니다. 청소를 위해 청소제에 그러한 렌즈를 담그지 말고 청소할 때 열심히 닦지 마십시오. 그렇지 않으면 반 팽창 필름이 손상되고 렌즈가 손상됩니다. 유리 표면을 청소하는 방법에는 여러 가지가 있으며, 그 중 하나는 유리 표면의 원래 오염 정도, 후속 유리 표면 처리 공정 및 최종 제품의 목적에 따라 선택되거나 결합 될 수 있습니다. 광학 유리의 오일 안개, 물 습식 미스트 및 오일-수 혼합 안개는 또한 세척제를 사용하여 청소할 수 있으며 세척 방법은 렌즈의 것과 유사합니다. 광학 유리 표면의 곰팡이는 일반적인 현상입니다. 광학 유리가 곰팡이가 생기면 빛이 표면에 흩어져 이미지가 흐려지고 심각한 경우 기기가 폐기됩니다. 광학 유리의 곰팡이의 이유는 표면에 미생물 포자가 있기 때문입니다. 온도와 습도가 적절하고 "영양소"가 필요하면 빠르게 자라서 곰팡이 반점을 형성합니다. 광학 유리를 반 마리 곰팡이와 방아 공동으로 만드는 것이 특히 중요합니다. 곰팡이가 발생하면 즉시 청소해야합니다. 건조에주의하십시오.

식물을 담그는 식물은 화학 물질에 의해 제조 된 용액에 신선한 식물 재료를 저장하여 식물의 원래 색과 모양을 관찰 할 수 있습니다. 식물을 담그는 표본은 보존 효과가 우수하고 보존 시간이 길어 식물의 원래 밝은 색상을 복원합니다. 그것은 많은 장점이 있으며 식물 연구에 필수적인 과학적 기초를 제공합니다. 몸을 담그는 표본은 어떻게 식물의 원래 색을 유지합니까? 식물이 녹색 인 이유는 식물의 엽록체에 엽록소가 들어 있기 때문입니다. 엽록소는 복잡한 유기 화합물입니다. 분자 구조의 중심에는 금속 마그네슘 원자가 있습니다. 엽록소가 녹색 인 이유는 마그네슘 원자의 핵심 구조를 포함하기 때문입니다. 식물에 원래 녹색을 유지하려면 엽록소의 마그네슘 이온을 구리 이온으로 대체해야합니다. 그것의 방법은 산을 사용하여 엽록소 분자에서 마그네슘을 분리하는 것입니다. 현재 엽록소에는 마그네슘이 없기 때문에 식물은 갈색이됩니다. 그런 다음 엽록소 분자의 코어 마그네슘을 구리로 교체하십시오. 코어가 매우 안정적이기 때문에 구리 원자를 갖는 엽록소 분자의 구조는 분해 및 파괴가 쉽지 않으며 알코올이나 포르말린에 용해되지 않습니다. 따라서, 이러한 방식으로 처리 된 식물 샘플은 보존 용액에서 오랫동안 녹색으로 보존 될 수있다.

프레스 시편으로도 알려진 왁스 잎 시편은 가장 일반적인 종류의 식물 표본입니다. 식물의 자연적이고 진정한 형태 학적 특성을 유지할 수있는 표본을 만들기 위해 식물 종을 정확하게 식별하는 것이 중요합니다. 왁스 잎 시편의 장점은 오랫동안 보존 될 수 있다는 것입니다. 세계에서 오랜 역사를 가진 왁스 잎 표본의 수집은 16 세기 경으로 거슬러 올라갈 수도 있습니다. 그러나이 전통적인 방법으로 만든 왁스 잎 표본은 식물에서 엽록소와 안토시아닌의 파괴로 인해 사라졌습니다. 또한 왁스 잎 시편은 프레스 공정을 사용하기 때문에 최종 제품은 갈색 노란색으로 사라지고 테이블 용지에 고정 된 평평한 상태를 나타냅니다. 이는 미적 관점에서 지배적이지 않습니다. 억제 과정은 식물의 원래 생태적 특성을 예술적 아름다움과 결합하는 열쇠입니다. 시편을 수집 한 후 현장 프레스 효과는 최고이지만 실제 작업은 시간이 많이 걸리고 노동 집약적이므로 어렵습니다. 따라서 식물은 자체 밀봉 비닐 봉지에 넣을 수 있습니다. 압출 변형을 방지하려면 벨트를 팽창시키고 해당 수집 정보를 표시하고 밀봉 후 누른 후 다시 가져와야합니다. 물 손실에 얇고 취약한 식물의 경우 식물 특성을 정확하게 설명하기 위해 현장에서 억제해야합니다. 시편 폴더에 식물을 놓을 때 뿌리, 가지, 잎, 꽃 및 과일을 뿌려 부분적으로 뒤집어 시편 특성을 더 잘 이해하십시오.

생물학적 표본의 사용은 다양하며 과학 연구 및 생물학적 교육에서 중요한 역할을합니다. 또한 그림, 전시회, 시청 등에도 큰 가치가 있습니다. 과학적 연구를 위해, 생물학적 표본은 과학적 연구를위한 직접적이고 신뢰할 수 있고 정확하며 직관적 인 대상과 데이터를 제공 할 수 있으며, 이는 동물과 식물의 삶, 성장 및 발달 법을 연구하는 데 큰 의미가 있습니다. 예를 들어, 식물 분류 학자들은 다양한 식물을 체계적으로 분류 할 때 식물 표본을 주요 기준으로 가져 가서 뿌리, 줄기, 잎, 꽃, 과일, 종자 및 기타 측면에서 연구 대상의 차이를 분석해야합니다. 각 식물을 정확하게 식별하기 위해 그들의 특성을 판단하십시오. 교육에서 생물학적 표본은 교사가 설명한 지식을보다 직관적으로 표시하여 학생들의 이해와 인식을 심화시킬 수 있습니다. 예를 들어, 동물 및 식물 박물관을 방문 할 때 많은 소중한 동물과 식물 표본을 볼 수 있습니다. 이 생물학적 표본의 전시회는 대다수의 젊은이들에게 생물학적 지식을 배우고 학습에 대한 관심을 향상 시키며 자연에 대한 대중의 이해를 향상 시키며 동물과 식물 보호의 올바른 개념을 확립합니다. 생물학적 표본은 인간 자연 유산에서 가장 귀중한 영구 기록이며 과학적 연구, 과학적 지식 대중화 및 인간의 일상 생활에서 대체 할 수없는 역할을합니다. 시대의 발전으로 인간은 천연 자원의 사용을 전환했으며 오늘날 환경은 점차 악화되었습니다. 시편의 형태로 생물학적 종을 보존하는 것도 생물학적 발달과 진화 과정에 대한 향후 연구에 큰 의미가 있습니다.

실험 클래스에서, 우리는 모두 생물학적 슬라이드를 사용했으며, 생물학적 슬라이드는 우리가 더 나은 연구와 연구에 도움이 될 수 있지만 생물학적 슬라이드를 만드는 과정에는 필연적으로 몇 가지 문제가 있습니다. 이제 생물학적 슬라이드를 만드는 과정에서 어떤 문제가 발생할지 이해합시다. 1. 탈수, 투명성, 너무 긴 왁스 몸을 담그는 시간 및 너무 높은 온도는 조직의 브리티 니스를 유발할 수 있습니다. 또한, 조직 자체의 질감은 또한 조직의 브리티 니스를 유발할 수 있습니다. 공기를 왁스 슬라이스에 불고 절단하려고 시도 할 수 있습니다. 2. 나이프는 날카 롭지 않고 나이프 각도가 너무 크고 유리 슬라이드가 너무 두껍기 때문에 유리 슬라이드가 롤업 될 수 있습니다. 3. 블레이드가 고르지 않으면 슬라이드 나이프가 똑바로 아니며 슬라이드 나이프는 왁스 블록과 평행하지 않으면 왁스가 구부러 질 수 있습니다. 4. 나이프베이스와 왁스 블록으로 나이프가 고정되지 않으면 조직이 너무 단단하고 슬라이드 기계 스핀들이 너무 앞으로 나오거나 슬라이드 기계가 마모 된 경우 두께가 고르지 않습니다. 5. 유리 슬라이드의 균열은 나이프 갭, 파라핀의 불순물, 석회화, 뼈 조각 또는 조직의 유선 매듭 또는 면화 종이 섬유로 인해 발생할 수 있습니다. 6. 불량 조직 탈수는 유리 슬라이드가 연결되지 않았거나 잘라낼 수 없으며 유리 슬라이드가 매우 두껍거나 유리 슬라이드 뒤의 왁스 블록이 흰색, 침윤 등이 있다는 현상으로 이어질 수 있습니다. 실제 작업에는 여전히 많은 문제가 있습니다. 이 측면에 관심이 있다면 자세한 내용은 당사를 팔로우 할 수 있습니다.

냉동 섹션을 잘 만들려면 섹션의 품질을 확인하고 동시에 수술 중 빠른 병리학 진단의 정확도를 향상 시키면 냉동 섹션 기계의 이해 및 선택과 큰 관계가 있습니다. 동결 슬라이서는 슬라이싱 장치와 냉장 시스템으로 구성됩니다. 일반적으로 완전한 동결 슬라이싱 시스템은 호스트 머신 (냉동고 상자, 샘플 헤드, 빠른 동결 테이블 등), 도구 홀더 및 블레이드로 구성됩니다. 냉동 슬라이서의 작동을 표준화하는 방법은 무엇입니까? 봅시다 1. 먼저, 기기가 단단하고 안정적으로 배치되어 있는지, 전원 플러그와 소켓 사이의 연결이 신뢰할 수 있는지, 접지가 좋은지 여부를 확인하십시오. 환기 및 열 소산을 용이하게하기 위해 특정 간격이 남아 있으며 전압이 정상인지 여부. 2. 전원 공급 장치의 메인 스위치를 켜고 냉동고의 온도, 콜드 테이블의 온도, 샘플 헤드의 온도 및 슬라이스 두께를 확인/설정하고 일반 인터페이스를 입력하십시오 (일반적 으로이 기계. 24 시간 동안 전원이 켜지고 정상 스타트 업 상태에 있습니다. 콜드 테이블 냉장이 직장에서 시작되어 직장에서 꺼져있는 한). 3. 슬라이싱 절차 : 샘플 헤드에 임베딩 에이전트가 포함 된 "샘플링 된"시편을 넣고 빠른 동결 테이블에 "빠른 동결"을 위해 "슬라이싱 핸드 휠"을 잠그십시오. 잠시 후 샘플 클램프로 냉동 시편을 고정하고 먼저 시편을 수리 한 다음 슬라이스 및 패치를 수리하십시오. 4. 패치를 "아세트 알코올 용액"에 "고정"하기 위해 패치를 담그십시오. 5. 절단 샘플은 대기 또는 다운 스트림 공정에 사용되거나 사용되도록 번호를 매기고 저장해야합니다. 6. 셧다운 절차 - 핸드 휠을 잠그고 냉동실을 청소하고 냉동실 문을 열고 전원 스위치를 잘라냅니다. 이 기계는 연속적인 작동 기계이며 지속적으로 전원을 공급합니다. 일반적으로 종료되지 않습니다. 짧은 시간 동안 사용되지 않으면 차가운 테이블의 냉장을 끄고 냉동실의 온도를 0 ° 위로 설정하여 정지하십시오.

(1) 재료의 품질은 슬라이스의 품질에 직접적인 영향을 미칩니다. 재료를 복용 할 때, 의사는 재료 나이프를 앞뒤로 끌지 않도록 날카로운 재료 나이프를 가져와야하며, 재료를 복용 할 때 가능한 한 섬유질과 평행하게 자르는 것이 좋습니다. (2) 고정은 기술 실의 작업의 일부이며 전체 생산 프로세스의 일부를 해결할 수없는 부분입니다. 고정은 조직 세포가자가 분해 및 손상으로부터 방지하고, 세포의 효소에 의한 단백질의 분해를 방지하며, 원래 구조를 생명과 비슷하게 유지하는 것입니다. (3) 고정 후의 물 세척은 일반적으로 많은 사람들에 의해 무시되며, 불완전한 세척은지지 판과 염색의 색상이 열악하게 발생하기 쉽다. (4) 탈수는 탈수기를 사용하여 조직 내의 물을 대체하는데, 이는 유기 용매의 침투에 도움이된다. 탈수가 완료되는지 여부는 조직이 완전히 투명 할 수 있는지 여부와 직접 관련이 있으며 과도한 탈수는 부서지기 쉬운 조직을 유발하기 쉽다; (5) 슬라이스를 잘 자르려면 일찍 날카로운 슬라이싱 나이프가 있어야합니다. 그라인딩 나이프는 기술자를 슬라이싱하는 비교적 기본적인 기술입니다. 나이프 연삭의 품질은 슬라이스의 품질과 직접 관련이 있습니다. (6) 염색 시간은 구형 및 새로운 연료, 온도 및 칩의 유형에 따라 결정되어야한다. 칩은 따뜻한 물 또는 수돗물로 푸른 채로 씻어서 완전히 세척하여 염산 잔류 물로 인한 페이딩을 방지 할 수 있습니다. (7) 커버 시트의 껌은 너무 얇지 않아야합니다. 시트를 밀봉 할 때 껌은 덮개 시트로 균등하게 채워져 있어야하며 껌은 오버플로되지 않아야합니다. 조직은 거품없이 완전히 덮여 있어야합니다. 라벨은 슬라이드의 왼쪽 또는 오른쪽에 붙여 넣어야합니다. 번호는 명확하게 작성된 후에 만 ​​인쇄 할 수 있습니다.

작은 생물학적 조각을 통해 생물학적 특성을 이해할 수 있습니다. 생물학적 교육 슬라이스는 생물학적 교육에 중요한 가치를 지니고 있으며 직관적 인 교육 도구로서 역할을합니다. 파라핀 섹션은 영구 섹션이라고도하며, 이는 주로 다양한 식물 조직의 섹션에 적합합니다. 섹션의 두께는 제어하기 쉽고 선명도가 좋으며 연속 섹션으로 만들 수 있으며 오랫동안 보존하기 쉽습니다. 파라핀 슬라이스 제조업체는 식물 파라핀 슬라이스를 보존하는 방법을 알려줍니다. 관찰 재료를 가능한 빨리 특정 고정 장치에 넣고 세포를 빨리 죽이고 자연스러운 삶의 상태로 유지하십시오. 재료가 고정 된 후에는 사용을 위해 보존해야합니다. 이 과정에서 재료의 구조는 변하지 않아야합니다. 일반적으로 사용되는 보존 용매는 70% 알코올 용액으로, 일반 물질이 오랫동안 나빠지는 것을 막을 수 있습니다. 또한 냉장고에 보관해야합니다. 알코올 농도의 사용 : 50%와 같은 낮은 농도 알코올을 가진 약하고 부드러운 식물을 고정합니다. 70% 알코올을 사용하여 더 오래된 재료를 고치거나 고정하십시오. 식물 배아 재료가 고정 된 경우, 공식은 50% 알코올 89ml+빙하 아세산 5ML+포름 알데히드 40%로 수정할 수 있습니다. 생물학적 조직 슬라이스의 4면은 수축 및 변형없이 고정되며, 양쪽의 플렉시 글라스의 매끄러운 표면은 고정 슬라이스의 양면을 보호하며, 이는 생물학적 조직의 내부 구조를 관찰하기에 편리합니다.

형광 현미경은 면역 형광 세포 화학의 기본 도구입니다. 광원, 필터 플레이트 시스템, 광학 시스템 및 기타 주요 구성 요소로 구성됩니다. 일반적인 광학 현미경을 관찰하십시오. 슬라이드 시편은 일반적으로 헤 마톡 실린 에오신으로 염색되며 때로는 특수 염색으로 염색됩니다. 우선, 광학 현미경은 아티팩트, 변형 및 왜곡을 피하기 위해 가능한 한 생물학적 물질의 자연 상태를 유지해야하므로 생물학적 물질을 고정해야합니다. 필름은 광학 현미경으로 이미지를 만들기 전에 얇고 투명해야합니다. 재료를 얇은 슬라이스로 자르거나 가벼운 프레스 또는 기타 수단으로 분산시키는 것 외에도 구조의 세부 사항을 더 잘 관찰하기 위해 투명하고 염색하는 다른 방법을 사용해야합니다. 실제로, 모든 생물학적 물질은 파라핀 임베딩, 슬라이싱 (또는 번짐), 접착력, 왁스 용해, 투명성 및 기타 공정을 통해 두께 및 투명성의 요구 사항을 충족시키는 시편을 얻은 다음 염색 절차를 통해 어느 정도의 대비를 얻을 수 있습니다. 생물학적 슬라이스는 종종 표준 크기 26x76mm이고 두께는 1.1 ^ -1.3mm의 유리 슬라이드에 붙여 넣습니다. 유리 슬라이드의 양면은 평행 평면이어야합니다. 유리 슬라이드의 두께에 대한 요구 사항은 그다지 엄격하지 않지만, 두께가 더 높은 보정 정도를 갖는 일부 수집기의 자유 작동 거리를 초과하면 유리 슬라이드의 두께가 광원에 초점을 맞추고 이미지의 이미지를 형성하는 데 중요해집니다. 객체 평면에서 필드 정지. 이 경우 두께가 0.9 ^ -1.0mm 인 유리 슬라이드가 적절합니다.

형광 현미경은 필터 컬러 시스템을 통한 여기 광으로 특정 파장 (자외선 3650 또는 바이올렛 블루 라이트 4200 등)의 빛을 방출하는 높은 발광 효율을 갖는 포인트 광원입니다. 여기 후, 시편의 형광 물질은 다른 색상의 형광을 방출 한 다음 대물 렌즈와 접안 렌즈의 증폭을 통해 관찰합니다. 이런 식으로, 강한 대비 배경에서, 형광조차도 매우 약하고, 인식하기 쉽고 감도가 높다. 주로 세포 구조 및 기능 및 화학 조성 연구에 사용됩니다. 형광 현미경의 광원은 직접 조명으로서 작용하는 것이 아니라 시편 내부의 형광 물질을 자극하기위한 에너지 원으로서 작용한다. 우리가 시편을 관찰 할 수있는 이유는 광원의 조명이 아니라, 흥분된 광 에너지의 흡수 후 시편의 형광 물질에 의해 제시된 형광 현상이다. 형광 현미경의 주요 특징은 광원이 특정 파장 범위에서 많은 양의 여기광을 공급할 수 있음을 알 수 있습니다. 따라서 시편의 형광 물질이 필요한 여기 광의 필요한 강도를 얻을 수 있습니다. 동시에 형광 현미경에는 해당 필터 시스템이 있어야합니다. 형광 현미경은 형광 현미경 검출을위한 특별한 도구이며, 일종의 광학 현미경입니다. 광학 현미경의 기본 구조 및 광학 증폭 외에도 형광 특성에 기초한 다음과 같은 고유 한 기능 요구 사항이 있습니다. (1) 형광을 자극하기에 충분한 에너지를 제공하는 광원. (2) 다른 물질에 의해 필요한 여기 스펙트럼에 적응하기 위해 컬러 필터 세트를 사용하면, 적절한 여기 스펙트럼이 광원으로부터 선택되어 스펙트럼이 물질의 흡수 스펙트럼과 일치하여, 최대 형광. ( 3) ) 약한 형광 이미지를 얻으려면 컷오프 컬러 필터 세트도 설정되어야하며, 이는 필요한 관찰 된 형광이 이미징을 위해 시스템으로 들어가고, 나머지 가벼운 파를 방출 된 컬러 필터와 방출 된 컬러 필터를 설정해야합니다. 빛은 이미지 라이닝을 개선하기 위해 차단됩니다. ( 4 ) 증폭 된 광학 시스템은 형광의 특성에 적응해야하며, 마지막으로 관찰되고 사진을 찍을 수있는 높은 밝기 및 고해상도를 갖는 좋은 형광 이미지를 얻어야한다. (5) 기기의 안전성. 전기 기기의 안전성을 보장하기 위해 자외선 및 수은 램프 폭발의 누출을 방지하기 위해 수은 램프의 적용이 필요합니다.

점퍼, 벼룩 및 플랜 탑퍼와 같은 작은 곤충의 경우 바늘을 직접 삽입해서는 안되지만 특별한 방법을 사용해야합니다. 1 . 이중 보간 바늘 크기 00은 얇고 짧고 날카로운 팁과 바늘 캡이 없습니다. 작고 단단한 곤충을 뚫는 데 특별히 사용됩니다. 곤충 몸은 작은 집게로 집어 들었고, 표본은 일반 바늘 위치에 따라 마이크로 니들로 수직으로 구멍을 뚫고 작은 삼각형 코르크 블록 또는 단단한 종이에 삽입되었습니다. 그런 다음 1 번 위의 곤충 바늘을 삼각형 종이의 바닥 가장자리 근처에 삽입 한 다음 곤충 위치를 3 단계 단계로 고정시켰다. 삽입 된 시편과 라벨은 곤충 바늘의 왼쪽에 위치했습니다. 2. 웜 보간 바닥 가장자리 길이가 0.4cm이고 높이가 1cm 인 작은 이등변 삼각 카드로 골판지를 자릅니다. 곤충 바늘 끝을 라텍스에 담그고 삼각 카드 끝을 부드럽게 가리 킵니다. 그런 다음 곤충 몸을 바늘 끝으로 붙이고 라텍스에 넣고 곤충 몸을 집어 들기 위해 바늘을 빠르게 철수하십시오. 이 작업의 핵심 요점은 바늘 끝에 라텍스가 너무 많아서는 안된다는 것입니다. 접착 된 시편을 똑바로 세워야한다면 곤충 팁을 사용하여 저어 줄 수 있습니다. 마지막으로, 곤충 바늘은 삼각형 필름의 바닥 가장자리 근처에 삽입 될 수 있으며, 곤충 위치는 3 단계 단계로 고정 될 수 있으며, 장기 저장을 위해 표본 상자에 라벨을 삽입 할 수 있습니다.

생물학에 대한 사람들의 연구를 통해 실험 구조를 관찰하기 위해서는 실험적 관찰을 위해 점점 더 많은 실험 기사를 썰어야합니다. 따라서, 다양한 생물학적 약물 실험 절단 기계가 등장했다. 슬라이싱 메커니즘의 출현은 사람들이 다양한 실험 샘플을 처리하는 데 도움이되었습니다. 실험 구조의 관찰을 용이하게하기 위해 사람들은 테스트 샘플을 전제로 처리 할뿐만 아니라 두께를 정확하게 슬라이스해야합니다. 슬라이싱 방법은 날카로운 절단 도구를 사용하여 조직을 매우 얇은 슬라이스로 자르는 것입니다. 재료는 고정, 탈수, 임베딩, 슬라이싱, 염색 등과 같은 일련의 특수 처리를 겪어야합니다. 과정은 매우 복잡합니다. 생산 공정에서는 다양한 물질의 재산 요구 사항에 따라 합리적으로 선택할 수있는 일련의 물리적 및 화학적 처리를 겪어야합니다. 단면화 과정이 번거롭고 기술은 복잡하지만 세포 사이의 정상적인 관계를 유지하고 더 나은 시간 동안 세포의 원래 모양을 보존 할 수 있으므로 여전히 광학 현미경을 만드는 주요 방법입니다. 기존 슬라이서는 일반적으로 수동 슬라이스를 사용합니다. 슬라이스의 안정성과 정확도는 낮으며 슬라이싱의 두께는 일관성이 없습니다. 작동하기 쉽고, 사용하기 쉽고, 슬라이싱의 안정성과 정확성을 향상시키는 데 편리한 생물학적 슬라이서 장치입니다. 현재, 일반적으로 사용되는 생물학적 조직 슬라이서, 파라핀 슬라이서, 냉동 슬라이서 등이 있습니다. 생물학적 조직 슬라이서는 높은 정확도와 안정성으로 유명합니다. 스테핑 모터에 의해 공급되며 샘플 후퇴 및 슬라이스 카운팅의 기능을 갖고 샘플 헤드의 X / Y 축에 정확하게 위치합니다. 슬라이서의 작동 원리는 비교적 간단합니다. 즉, 슬라이서의 날카로운 절단 표면을 사용하면 물체와 재료가 점의 비율 또는 폭에 따라 조각으로 절단됩니다. 생산 또는 제약 또는 기타 용도에 적합합니다. 생물학적 슬라이서의 주요 목적은 의약 재료, 세포 조직 및 왁스와 같은 재료를 슬라이스하여 다음 과정을 촉진하는 것입니다.

1. 핀 삽입 고정 일반적으로 독 살인 후 신선한 표본이 수집됩니다. 시편이 건조하고 단단한 경우, 웜을 고정하기 위해 바늘을 삽입하기 전에 1-2 일 동안 연화제에 넣어야합니다. 핀셋으로 연화제에서 곤충을 조심스럽게 꺼내서 가능한 한 손으로 만지는 것을 피하고 자세 무대 전체에 놓으십시오. 곤충 몸체의 크기에 따라 해당 곤충 바늘을 선택하고 곤충 몸의 중간 선의 약간 오른쪽에서 곤충 바늘을 삽입 한 다음 복부에서 전달하여 일반적으로 바늘을 두 발. 2. 날개를 펼치고 자세를 똑바로 세우십시오 나비, 잠자리 및 기타 곤충은 날개를 뿌려야합니다. 날개를 퍼 뜨릴 때 먼저 바늘을 바늘로 뿌린 판에 조심스럽게 삽입하여 곤충 몸이 그루브로 떨어지고 날개와 퍼지는 플레이트가 수평 위치에 있습니다. 그런 다음 집게로 날개를 펼치기 위해 앞 날개의 뒤의 가장자리를 몸에 수직으로 만듭니다. 날개가 이상적인 위치로 조정 된 후 한 손으로 스트립 용지로 날개를 누르고 다른 한편으로는 스트립 용지 주위에 핀을 삽입하지만 날개에 삽입하여 스트립 용지와 날개 연장판이 있습니다. 날개를 고치기 위해 밀접하게 결합 할 수 있습니다. 날개를 펼친 후 안테나, 발, 복부의 위치를 ​​조정하면 완료됩니다. 3. 건조 및 보관 시편이 위의 동작을 완료 한 후 거의 완료되었습니다. 나머지는 시편을 건조시키는 것입니다. 일반적으로, 약 일주일 동안 50 ℃에서 일정한 온도 상자에서 건조 될 수있다. 건조 상자가 없으면 건조를 위해 실내 환기장에 배치 할 수도 있습니다. 건조 후, 시편은 시편 상자에 저장 될 수 있습니다. 시편 상자는 통풍이 잘되고 건조한 장소에 보관해야합니다. 각 표본은 소중히 여기고 활용되어야하는 삶을 나타냅니다. 예를 들어, 그 모양을 신중하게 관찰하고 다른 과학적 연구를 분류하고 수행하려고 노력하십시오.

파라핀 섹션은 기존의 조직 학적 기술에서 가장 널리 사용되는 방법입니다. 그것은 정상 세포와 조직의 형태 학적 구조를 관찰하는 데 사용될뿐만 아니라 병리학, 법의학 및 기타 분야에서 세포와 조직의 형태 학적 변화를 연구, 관찰 및 판단하기 위해 사용하는 주요 방법으로 널리 사용되었습니다. 다른 많은 학문과 분야. 파라핀 절단 방법은 재료 추출, 고정, 세척 및 탈수, 투명성, 왁스 침수, 삽입, 섹션 및 붙여 넣기, 탈 왁스, 염색, 탈수, 투명성 및 밀봉의 단계를 포함한다. 파라핀 섹션은 일반적으로 HE 염색 또는 IHC에 사용됩니다. 두께는 더 얇고 일반적으로 4UM, 공정은 더 복잡하며 샘플의 품질은 다른 조직의 유형과 구성에 따라 달라지며, 이는 제조업체의 경험에 더 의존합니다. 최상의 실험 조건을 얻기 위해 실험 과정에서 지속적으로 최적화되어야합니다.

일반 생물학적 현미경의 배율은 1000-1600 배에 도달 할 수 있습니다. 일반적으로 곰팡이 및 효모와 같은 미생물은 비교적 크며 저전력 목표 렌즈와 고출력 목표 렌즈로 좋은 결과를 얻을 수 있습니다. 그러나 염색 된 박테리아의 형태와 진핵 세포의 형태 학적 구조를 보려면 오일 렌즈를 사용하는 것이 가장 좋습니다. 오일 렌즈는 일종의 객관적인 렌즈의 현미경입니다. 전체 이름은 오일 스테인 대물 렌즈입니다. 현미경 대물 렌즈의 매체에는 공기, 물 및 오일이 포함됩니다. 후자의 두 가지는 고해상도 대물 렌즈에 사용됩니다. 오일 거울의 올바른 사용을 마스터하십시오 1. 오일 렌즈를 사용할 때는 먼저 유리 슬라이드에 아스팔트를 떨어 뜨려 오일 렌즈로 들어가는 빛을 높이고 시야의 밝기를 향상시키고 물체 이미지를 더 깨끗하게 만듭니다. 2. 현미경을 테이블 위에 똑바로 세우고 거울 암을 구부려 무대를 기울여 아스팔트의 유출을 피하고 관찰에 영향을 미치고 테이블의 오염을 피하십시오. 3. 조준 자연광이 광원으로 사용되면 평면 반사기를 사용해야합니다. 인공 조명이 사용되는 경우 오목한 거울을 사용해야합니다. 먼저 조리개를 열고 반사기를 회전시켜 빛 수집기에 빛을 집중시킵니다. 가벼운 수집기를 위아래로 움직이고 최상의 밝기를 얻기 위해 필요한 경우 조리개를 확장 할 수 있습니다. 4. 포커스 조정 : spe 신사를 무대에 놓고 시편 푸셔로 고정시키고 부분을 대물 렌즈 아래에서 검사 할 부분을 움직입니다. 먼저 저전력 렌즈가있는 시편의 위치를 ​​찾은 다음 렌즈 배럴을 높이고 시편에 렌즈 오일 한 방울을 테스트 할 수 있도록 오일 렌즈를 교체하십시오. gil 기름 렌즈가 오일에 침지 될 때까지 굵은 조정기를 돌려서 스테이지를 천천히 올리십시오 (또는 렌즈 배럴을 점차적으로 낮추십시오). 현재 시편을 분쇄하지 않고 렌즈를 손상시키지 않도록 눈을 측면에서 관찰해야합니다. gin- 그러면 양쪽 눈을 접안 렌즈로 움직이고 접안 렌즈에서 관찰 한 다음 거친 조정기를 천천히 회전하거나 (무대를 낮추거나 렌즈 배럴을 올리십시오) 반대 방향으로 회전하십시오. 흐릿한 객체 이미지가 있으면 미세 조정기로 변경하고 객체 이미지가 깨끗해질 때까지 회전하십시오. ∎ 관찰 후 렌즈 배럴을 먼저 올리려면 오일 렌즈를 한쪽으로 비틀기 전에 시편을 내려야합니다. 오일 렌즈를 사용한 후 렌즈의 오일은 렌즈 와이핑 페이퍼로 즉시 닦아 져야합니다. 렌즈 오일이 렌즈에서 건조되면 렌즈를 렌즈 와이핑 페이퍼에 담근 작은 자일렌으로 닦을 수 있으며 잔류 자일렌을 드라이 렌즈 용지로 닦아내어 자일린이 잇몸을 침투하고 용해시키는 것을 방지 할 수 있습니다. 렌즈를 고정하여 렌즈가 이동하거나 떨어지게합니다.

영구 슬라이드 시편을 영구적으로 유지하고 사용할 수 있습니다. 적분 하중 방법 : 슬라이드 시편을 만들기 위해 전체 작은 유기체 또는 장기의 일부를 밀봉하는 방법입니다. 이 방법은 일반적으로 단세포 조류, 필라멘트 조류, 곰팡이, 소프트 브리오 피트, 양치류 및 양치류 및 스포 랑이, 고등 식물의 표피, 꽃잎 및 꽃가루 곡물, 프로토조안, 날개 등의 작은 몸체 또는 얇은 몸체가있는 유기체 또는 기관에 적용 할 수 있습니다. 안테나, 곤충 발, 병아리 배아 주의를 기울여야합니다. (1) 슬라이드를 잡을 때 평평하게 유지하거나 플랫폼에 배치해야합니다. 물이 떨어지면 물의 양이 적절해야하며 덮개 유리로 덮여 있어야합니다. (2) 재료는 해부 바늘이나 집게와 겹치지 않고 동일한 평면에서 전개되어야한다. (3) 덮개 유리를 놓을 때는 거품을 방지하기 위해 한쪽에서 물을 떨어 뜨리면 천천히 물을 뿌립니다. (4) 염색 할 때, 덮개 유리의 한쪽에 염색 액체 한 방울을 넣고, 흡수 용지로 다른 쪽에서 빨아서 덮개 유리 아래의 시편을 균일하게 착색합니다. 착색 후 동일한 방법을 사용하고 물 한 방울을 떨어 뜨리고 염색 용액을 빨고 현미경으로 관찰하십시오.

1. 다른 구성 요소 전자 현미경에는 렌즈 배럴, 진공 장치 및 전력 캐비닛의 세 부분이 있습니다. 광학 현미경은 주로 4 개의 부분, 즉 객관적인 렌즈, 접안 렌즈, 반사기 및 응축기로 구성됩니다. 2. 이미징 원리는 다릅니다. 전자 현미경은 전자 빔을 사용하여 샘플을 관통 한 다음 렌즈로 이미지를 확대합니다. 광학 현미경은 주로 볼록 렌즈의 확대 이미징 원리를 사용하여 샘플을 확대합니다. 3. 조명 소스가 다릅니다. 전자 현미경에 의해 사용되는 조명 공급원은 전자 건에 의해 방출되는 전자 흐름이다; 광학 현미경의 조명 공급원은 가시 빛 (햇빛 또는 빛)입니다. 전자 흐름의 파장은 광파의 파장보다 훨씬 짧기 때문에 전자 현미경의 배율 및 분해능은 광학 현미경의 배율보다 현저히 높다. 4. 렌즈는 다릅니다. 전자 현미경에서 확대하기위한 대물 렌즈는 전자기 렌즈 (중앙 부분에서 자기장을 생성 할 수있는 고리 모양의 전자기 코일)입니다. 광학 현미경의 대물 렌즈는 유리로 만든 광학 렌즈입니다. 전자 현미경에는 세 가지 전자기 렌즈 그룹이 있으며, 이는 광학 렌즈의 응축기 렌즈, 대물 렌즈 및 접안 렌즈에 해당합니다. 5. 다른 용도 고해상도로 인해 전자 현미경은 일반 현미경으로 구별 할 수없는 미세한 재료 구조를 관찰하고 재료 조성물을 분석하는 데 사용될 수 있습니다. 광학 현미경은 주로 생물학 및 의학에서 현미경 물질의 관찰 및 교육을받는 학생들을위한 실험 도구로 사용됩니다.