أخبار

أخذ عينات الأنسجة هي واحدة من الإجراءات المهمة لصنع الشرائح. وفقًا للمتطلبات المحددة للتدريس ، والبحث العلمي والتفتيش الخارجي ، يتم أخذ الأنسجة من الإنسان أو الحيوان ، ويتم تحديد موقع وأسلوب أخذ العينات. المتطلبات المحددة هي كما يلي: 1. مواد جديدة لضمان التركيب المورفولوجي الأصلي 2. حجم الأنسجة كتلة الحجم المثالي لكتلة الأنسجة هو 2.0x2.0x0.3cm ، بحيث يمكن للمثبت أن يخترق بسرعة وبشكل متساوٍ في الأنسجة 3. لا تضغط على كتلة الأنسجة. يجب أن تكون شفرة كتلة الأنسجة حادة. لا تشد الأنسجة بإحكام للغاية لتجنب تشوه الأنسجة والخلايا بسبب البثق. 4. توحيد موضع أخذ العينات. يجب أن تكون أخذ العينات دقيقة وفقًا للموضع التشريحي ، وتوحيد وفقًا للمتطلبات. 5. تحديد قسم كتلة الأنسجة يحدد اتجاه قسمه وفقًا لهيكل كل نسيج. غالبًا ما تكون المقاطع الطولية والعرضية هي المفتاح لعرض التركيب المورفولوجي للأنسجة. 6. الحفاظ على نظافة المواد. إذا كان هناك الأوساخ ، المخاط ، وما إلى ذلك في كتلة الأنسجة ، يمكن تنظيفها بالماء قبل وضعها في محلول التثبيت. 7. الحفاظ على الشكل الأصلي للأنسجة. بعد إصلاح الأنسجة الطازجة ، سوف يتقلص معظم الأنسجة ، وأحيانًا متشوهًا تمامًا. لذلك ، قم بتسوية الأنسجة للحفاظ على النموذج الأولي قدر الإمكان.

في حياتنا اليومية ، نتعرض لجميع أنواع النباتات ، وخاصة نباتات البذور ، بما في ذلك الصنوبر ، والتنوب ، والسرو ، و Ginkgo ، وجميع أنواع النباتات المزهرة والمثمرة. لدراسة تصنيف النبات بشكل منهجي ، يمكننا استخدام عينات النبات. يمكن تقسيم عينات النبات إلى الفئات التالية وفقًا لغرض الاستخدام (1) العينة التطورية: الغرض من التحضير هو مراقبة ودراسة تاريخ حياة النبات ، أي نمو النبات في كل مرحلة من إنبات البذور إلى النمو والتنمية والإزهار والإثمار. يستخدم عادة في التدريس البيولوجي ، والمقدمة ، والزراعة والبحث العلمي. (2) عينة كاملة: عادة ما تستخدم لتحديد النباتات والأسماء العلمية والأدوية العشبية الصينية. تستخدم هذه العينة أيضًا في مسح الغطاء النباتي في منطقة ما. على سبيل المثال ، التحقيق في الموارد النباتية للمدرسة أو الجبل. الجذور والسيقان والأوراق والأعضاء النباتية الأخرى للنباتات العليا هي إحدى قواعد تحديد النباتات ، لكنها غالبًا ما تكون مختلفة بسبب بيئات النمو المختلفة. الزهور والفواكه لها وراثة مستقرة نسبيا ، والتي يمكن أن تعكس أفضل الخصائص المتأصلة للنباتات ، وهي أساس مهم لتحديد النباتات وتحديدها. عند جمع العينات ، حاول جمع العينات ذات الجذور الكاملة والسيقان والأوراق والزهور والفواكه. يجب أيضًا حفر الأعشاب تحت الأرض. يعد شكل وترتيب sporangia ، والجذور ، والمقاييس ، و indumentum خصائص تصنيفية مهمة للسرخس ، والتي ينبغي الانتباه إليها عند التجميع. غالبًا ما يتم تحويل العينة بأكملها في عينة أوراق الشمع وعينة غمر اللون الأولية. (3) العينة التشريحية: الغرض من التحضير هو مراقبة ودراسة الهيكل التنظيمي الداخلي لعضو النبات. على سبيل المثال ، قم بتشريح المصباح من البصل لمراقبة بنية لوحة القاعدة ، وبراعم ، وورقة المقياس ، والجذر الليفي ، وما إلى ذلك. لوحظت المشيمة الغشاء الجانبي ووضع تحمل البذور للخيار عن طريق التشريح العرضي ؛ تم تشريح زهرة الخوخ طوليا لمراقبة أجزائها ومورفولوجيا مختلفة. لجمع هذا النوع من العينات ، تحتاج فقط إلى اختيار عضو صحي وممثل ، بدلاً من جمع الفرع بأكمله. عادة ما يتم تحويل العينات التشريحية إلى عينات مشربة مطهر. (4) عينة المقارنة: يتم استخدام عينة المقارنة بشكل أساسي لمقارنة أوجه التشابه والاختلاف في عضو من النباتات المختلفة. على سبيل المثال ، لمقارنة مورفولوجيا البذور من الديكوتيلينز و monocotyledons ، من الضروري جمع ثمار ناضجة من الاغتصاب وفول الصويا والخيار والطماطم ، وما إلى ذلك ، إزالة القشر ، تجفيف البذور ، وكذلك جمع ثمار القمح ، الأرز والذرة للمقارنة. يمكن تحويل عينة المقارنة إلى عينة من أوراق الشمع أو عينة مجففة من الهواء ، والفاكهة المنقوعة باللون الأساسي أفضل.

تتمثل عينة نقع النبات في تخزين مواد النبات الطازجة في المحلول التي أعدتها المواد الكيميائية ، بحيث يمكن ملاحظة اللون الأصلي وشكل النباتات. إن عينة نقع النبات لها تأثير جيد للحفظ ووقت محافظة طويل ، مع استعادة اللون الزاهي الأصلي للنباتات. لديها العديد من المزايا ، وتوفر أساسًا علميًا أساسيًا لأبحاث النبات. كيف تحافظ عينة النقع على اللون الأصلي للنباتات؟ السبب في أن النباتات خضراء هو أن البلاستيدات الخضراء من النباتات تحتوي على الكلوروفيل. الكلوروفيل هو مركب عضوي معقد. هناك ذرة المغنيسيوم المعدنية في وسط هيكلها الجزيئي. السبب في أن الكلوروفيل أخضر هو أنه يحتوي على الهيكل الأساسي لذرة المغنيسيوم. إذا كنت ترغب في الاحتفاظ بالأخضر الأصلي في النباتات ، فأنت بحاجة إلى استبدال أيونات المغنيسيوم في الكلوروفيل بأيونات النحاس. طريقتها هي استخدام الحمض لفصل المغنيسيوم عن جزيئات الكلوروفيل. في هذا الوقت ، لأن الكلوروفيل يفتقر إلى المغنيسيوم ، يصبح النبات بني. ثم استبدل المغنيسيوم الأساسي لجزيء الكلوروفيل بالنحاس. بنية جزيء الكلوروفيل مع ذرة النحاس لأن النواة مستقرة للغاية ، وليس من السهل أن تتحلل وتدمير ، وليس قابلة للذوبان في الكحول أو الفورمالين. لذلك ، يمكن الحفاظ على عينات النبات التي عولجت بهذه الطريقة باللون الأخضر لفترة طويلة في محلول الحفظ.

عينة أوراق الشمع ، المعروفة أيضًا باسم العينة المضغوطة ، هي النوع الأكثر شيوعًا من عينة النبات. من الأهمية بمكان تحديد الأنواع النباتية بشكل صحيح لصنع العينات التي يمكن أن تحافظ على الخصائص المورفولوجية الطبيعية والحقيقية للنباتات. ميزة عينات أوراق الشمع هي أنه يمكن الحفاظ عليها لفترة طويلة. يمكن أن تعود مجموعة عينات أوراق الشمع مع تاريخ طويل في العالم إلى القرن السادس عشر تقريبًا. ومع ذلك ، تلاشت عينة أوراق الشمع التي صنعتها هذه الطريقة التقليدية بسبب تدمير الكلوروفيل والأنثوسيانين في النبات. بالإضافة إلى ذلك ، نظرًا لأن عينة أوراق الشمع تستخدم عملية الضغط ، فإن المنتج النهائي يعرض حالة مسطحة تلاشت في اللون الأصفر البني وثابتة على ورق الجدول ، وهو ليس مهيمنًا من وجهة النظر الجمالية. عملية القمع هي مفتاح الجمع بين الخصائص البيئية الأصلية للنباتات والجمال الفني. التأثير الملحة في الموقع هو الأفضل بعد جمع العينة ، لكن العملية الفعلية تستغرق وقتًا طويلاً وكثافة عمل ، وهو أمر صعب. لذلك ، يمكن وضع النبات في كيس البلاستيك الختم الذاتي. من أجل منع تشوه البثق ، من الضروري تضخيم الحزام ، وتمييز معلومات التجميع المقابلة وإعادتها للضغط بعد الختم. بالنسبة للنباتات الرقيقة والضعيفة لفقدان المياه ، يجب قمعها في الموقع لوصف خصائص النبات بدقة. عند وضع النباتات في مجلد العينة ، حاول نشر الجذور والفروع والأوراق والزهور والفواكه ، وقلبها جزئيًا لفهم خصائص العينة بشكل أفضل.

استخدام العينات البيولوجية متنوعة ويلعب دورًا مهمًا في البحث العلمي والتدريس البيولوجي. بالإضافة إلى ذلك ، فهي ذات قيمة كبيرة في الرسم ، والمعرض ، والمشاهدة ، إلخ. بالنسبة للبحث العلمي ، يمكن للعينات البيولوجية أن توفر أشياء وبيانات مباشرة وموثوقة ودقيقة وبديهية للبحث العلمي ، والتي لها أهمية كبيرة لدراسة قوانين الحياة والنمو والتنمية للحيوانات والنباتات. على سبيل المثال ، عندما يصنف تصنيف المصنع بشكل منهجي النباتات المختلفة ، يجب أن يأخذوا عينات نباتية كأساس رئيسي ، يحللون اختلافات كائنات البحث في الجذر ، الجذعية ، الأوراق ، الزهور ، الفاكهة والجوانب الأخرى من خلال معايير النبات ، وذلك بشكل صحيح تحكم على خصائصهم ، وذلك لتحديد كل مصنع بدقة. في التدريس ، يمكن للعينات البيولوجية أن تجعل المعرفة يشرحها المعلمين بشكل أكبر ، وبالتالي تعميق فهم الطلاب وإدراكهم. على سبيل المثال ، عند زيارة متحف الحيوانات والنبات ، يمكننا أن نرى العديد من العينات الثمينة للحيوانات والنبات. يوفر معرض هذه العينات البيولوجية غالبية الشباب الذين يعانون من الظروف لتعلم المعرفة البيولوجية ، ويحسن اهتمامهم بالتعلم ، ويعزز أيضًا فهم الجمهور للطبيعة ، ويؤسس مفهومًا صحيحًا لحماية الحيوانات والنباتات. تعد العينات البيولوجية السجلات الدائمة الأكثر قيمة في التراث الطبيعي البشري ، وتلعب دورًا لا يمكن الاستغناء عنه في البحث العلمي ، وتعميم المعرفة العلمية والحياة اليومية البشرية. مع تطور العصر ، قام البشر بالانتقال في استخدام الموارد الطبيعية ، وتدهورت البيئة تدريجياً اليوم. يعد الحفاظ على الأنواع البيولوجية في شكل عينات ذات أهمية كبيرة للبحث المستقبلي في مجرى التطور البيولوجي والتطور.

في الطبقة التجريبية ، استخدمنا جميعًا الشرائح البيولوجية ، ونعلم أن الشرائح البيولوجية يمكن أن تساعدنا على الدراسة والبحث بشكل أفضل ، ولكن هناك حتما بعض المشكلات في عملية صنع الشرائح البيولوجية. الآن دعونا نفهم المشكلات التي ستحدث في عملية صنع الشرائح البيولوجية. 1. الجفاف والشفافية ووقت نقع الشمع الطويل ودرجة الحرارة المرتفعة للغاية قد تسبب هشاشة الأنسجة. بالإضافة إلى ذلك ، قد يتسبب نسيج الأنسجة نفسها أيضًا في هشاشة الأنسجة. يمكنك محاولة القطع أثناء نفخ الهواء إلى شريحة الشمع ، والتي قد تكون مرتاحًا. 2. السكين ليس حادًا ، وزاوية السكين كبيرة جدًا ، وشريحة زجاجية سميكة جدًا ، مما قد يتسبب في انتشار الشريحة الزجاجية. 3. إذا كانت الشفرة غير متساوية ، فإن سكين الشريحة ليس مستقيمًا ، ولم يكن سكين الشريحة موازيًا لكتلة الشمع ، فقد يكون الشمع عازمة. 4. إذا لم يتم تثبيت السكين بقاعدة السكين وكتلة الشمع ، فسيكون السماكة غير متكافئة إذا كان الأنسجة صعبة للغاية ، وكانت مغزل آلة الشريحة إلى الأمام ، أو تم ارتداء آلة الشريحة. 5. قد تكون الشقوق على الشريحة الزجاجية ناتجة عن فجوة السكين أو الشوائب في البارافين أو التكلس أو شظايا العظام أو عقدة سلكية في الأنسجة أو الألياف الورقية القطن. 6. قد يؤدي جفاف الأنسجة الضعيف إلى ظاهرة عدم توصيل الشرائح الزجاجية ، أو لا يمكن قطعها ، أو أن الشرائح الزجاجية سميكة للغاية ، أو أن الكتل الشمع خلف الشرائح الزجاجية بيضاء ، مملوءة ، إلخ. لا تزال هناك العديد من المشاكل في العملية الفعلية. إذا كنت مهتمًا بهذا الجانب ، فيمكنك متابعتنا لمزيد من المعلومات.

لجعل قسمًا تجميدًا جيدًا ، ضمان جودة القسم ، وفي الوقت نفسه ، تحسين دقة التشخيص المرضي السريع أثناء العملية ، فإنه يتمتع بعلاقة كبيرة مع فهم واختيار آلة القسم المجمد. يتكون قطان التجميد من جهاز تقطيع ونظام تبريد. بشكل عام ، يتكون نظام التقطيع الكامل للتجميد من جهاز مضيف (صندوق الفريزر ، رأس العينة ، طاولة تجميد سريعة ، إلخ) ، حامل الأدوات ، وشفرة. كيفية توحيد تشغيل Slicer المجمدة؟ لنلقي نظرة 1. أولاً ، تحقق مما إذا كانت الأداة موضوعة بحزم وثابتة ، وما إذا كان الاتصال بين قابس الطاقة والمقبس موثوقًا به ، وما إذا كان التأريض جيدًا. يتم ترك فجوة معينة حولها لتسهيل التهوية وتبديد الحرارة ، وما إذا كان الجهد طبيعيًا. 2. قم بتشغيل المفتاح الرئيسي لمصدر الطاقة ، والتحقق/ضبط درجة حرارة الثلاجة ، ودرجة حرارة الجدول البارد ، ودرجة حرارة رأس العينة ، وسمك الشريحة ، وادخل الواجهة العادية (بشكل عام ، هذا الجهاز يتم تشغيله لمدة 24 ساعة ، وهو في حالة بدء التشغيل العادية ، طالما أن تبريد الجدول البارد بدأ في العمل وإيقاف تشغيله في العمل). 3. إجراء التقطيع: ضع العينة "التي تم أخذ عينات منها" مع عامل التضمين على رأس العينة ، ضعها على طاولة التجميد السريع لـ "التجميد السريع" ، قفل "عجلة اليد التقطيع". بعد فترة من الوقت ، قم بإصلاح العينة المجمدة باستخدام مشبك العينة ، وإصلاح العينة أولاً ، ثم شريحة وتصحيح. 4. غمر التصحيح في "محلول الكحول الخليطي" إلى "الإصلاح". 5. يجب ترقيم عينات القطع وتخزينها للاستعداد أو المستخدمة في عملية المصب. 6. إجراء الإغلاق - قفل عجلة اليد ، وقم بتنظيف الفريزر ، وافتح باب الثلاجة ، وقطع مفتاح الطاقة. هذه الآلة هي آلة عمل مستمرة ، والتي يتم تشغيلها بشكل مستمر. بشكل عام ، لا يغلق. عندما لا يتم استخدامه لفترة قصيرة ، قم بإيقاف تشغيل تبريد الطاولة الباردة ، وضبط درجة حرارة الفريزر فوق 0 ℃ للتوقف.

(1) ستؤثر جودة المواد بشكل مباشر على جودة الشرائح. عند أخذ المواد ، يجب أن يكون لدى الأطباء سكين مواد حادة في وقت مبكر ، وذلك لتجنب سحب السكين المادي ذهابًا وإيابًا ، ومن الأفضل أن تقطع بالتوازي مع الألياف قدر الإمكان عند أخذ المواد ؛ (2) التثبيت هو جزء من عمل الغرفة الفنية ، وأيضًا جزء لا يمكن التعبير عنه من عملية الإنتاج بأكملها. التثبيت هو منع خلايا الأنسجة من التحلل التلقائي والفساد ، ومنع تحلل البروتينات بواسطة الإنزيمات في الخلايا ، والحفاظ على بنيتها الأصلية مماثلة للحياة (3) عادة ما يتم تجاهل غسل المياه بعد التثبيت من قبل العديد من الناس ، ومن السهل أن تتسبب الغسيل غير المكتمل في سوء لون الصفيحة الداعمة والصباغة ؛ (4) الجفاف هو استخدام مجفف لاستبدال الماء في الأنسجة ، وهو ما يفضي إلى تغلغل المذيبات العضوية. ما إذا كان الجفاف قد اكتمل أم لا يرتبط مباشرة بما إذا كان الأنسجة يمكن أن يكون شفافًا تمامًا ، ومن السهل التسبب في أنسجة هشة ؛ (5) إذا كنت ترغب في قطع شريحة جيدًا ، فيجب أن يكون لديك سكين تشريح حاد في وقت مبكر. طحن سكين هي تقنية أساسية نسبيا لفنيي التقطيع. ترتبط جودة طحن السكين مباشرة بجودة الشريحة ؛ (6) يتم تحديد وقت الصباغة وفقًا للوقود القديم والجديد ودرجة الحرارة ونوع الرقائق. يمكن خلط الرقائق بالماء الدافئ أو ماء الصنبور وغسلها بالكامل لمنع التلاشي الناتجة عن بقايا حمض الهيدروكلوريك ؛ (7) يجب ألا تكون اللثة على ورقة الغلاف رقيقة جدًا. عند إغلاق الورقة ، يجب أن تملأ اللثة بالتساوي مع ورقة الغلاف ولا تفيض اللثة. يجب تغطية الأنسجة بالكامل بدون فقاعات وموسمها. يجب لصق العلامة على الجانب الأيسر أو الأيمن من الشريحة. لا يمكن طباعة الرقم إلا بعد كتابته بوضوح

من خلال شرائح بيولوجية صغيرة ، يمكننا فهم الخصائص البيولوجية. شريحة التدريس البيولوجي لها قيمة مهمة في التدريس البيولوجي وتلعب دورًا كأداة تعليمية بديهية. يسمى قسم البارافين أيضًا القسم الدائم ، وهو مناسب بشكل أساسي لقسم الأنسجة النباتية المختلفة. من السهل التحكم في سمك القسم ، والوضوح جيد ، ويمكن تحويله إلى أقسام مستمرة ، والتي يسهل الحفاظ عليها لفترة طويلة. يخبرك الشركة المصنعة لشرائح البارافين بكيفية الحفاظ على شرائح البارافين النباتية. ضع مادة الملاحظة في مثبت معين في أقرب وقت ممكن ، اقتل خلاياه بسرعة ، وحاول إبقائها في حالتها الطبيعية للحياة. بعد إصلاح المادة ، يجب الحفاظ عليها للاستخدام. في هذه العملية ، مطلوب بنية المادة عدم التغيير. مذيب الحفظ شائع الاستخدام هو محلول الكحول بنسبة 70 ٪ ، والتي يمكن أن تمنع المواد العادية من السيء لفترة طويلة. مطلوب أيضًا لتخزينه في الثلاجة. استخدام تركيز الكحول: إصلاح النباتات الضعيفة والعطاء مع الكحول منخفض التركيز ، مثل 50 ٪ ؛ استخدم 70 ٪ من الكحول لإصلاح المواد القديمة أو الأصعب. إذا تم إصلاح مواد الجنين النباتي ، يمكن تعديل الصيغة إلى 50 ٪ من الكحول 89 مل+حمض الأسيتيك الجليدي 5 مل+الفورمالدهيد 40 ٪ للتخزين يتم تثبيت الجوانب الأربعة من شريحة الأنسجة البيولوجية دون انكماش وتشوه ، والسطح الأملس للزجاجات على كلا الجانبين يحمي الجانبين من الشريحة الثابتة ، وهو مريح لمراقبة التركيب الداخلي للأنسجة البيولوجية.

المجهر المضيف هو أداة أساسية للكيمياء الخلوية المناعية. وهو يتكون من مصدر الضوء ، ونظام لوحة المرشح ، والنظام البصري والمكونات الرئيسية الأخرى. لاحظ مع المجهر البصري العادي. عادة ما تكون عينات الشرائح ملطخة بالهيماتوكسيلين يوسن ، وأحيانًا مع تلطيخ خاص. بادئ ذي بدء ، يجب أن يحافظ المجهر البصري على الحالة الطبيعية للمواد البيولوجية قدر الإمكان لتجنب القطع الأثرية والتشوه والتشويه ، لذلك يجب إصلاح المواد البيولوجية ؛ يجب أن يكون الفيلم رقيقًا وشفافًا قبل أن يتم تصويره تحت المجهر البصري. بالإضافة إلى قطع المواد إلى شرائح رقيقة أو تشتتها عن طريق الضغط على الضوء أو وسائل أخرى ، يجب استخدام طرق أخرى لجعلها شفافة ومصبوزة ، وذلك لمراقبة تفاصيل الهيكل بشكل أفضل. في الواقع ، يمكن لجميع المواد البيولوجية الحصول على عينات تلبي المتطلبات في السماكة والشفافية من خلال تضمين البارافين ، والتقطيع (أو تلطيخ) ، والالتصاق ، وذوبان الشمع ، والشفافية والعمليات الأخرى ، ثم الحصول على درجة معينة من التباين من خلال إجراءات الصباغة. غالبًا ما يتم لصق الشريحة البيولوجية على الشريحة الزجاجية بحجم قياسي يبلغ 26 × 76 مم وسمك 1.1 ^ - 1.3 مم. يجب أن يكون جانبي الشريحة الزجاجية طائرات متوازية. إن متطلبات سماكة الشريحة الزجاجية ليست صارمة للغاية ، ولكن عندما يتجاوز سمكها مسافة العمل الحرة لبعض هواة الجمع مع درجة تصحيح أعلى ، يصبح سمك الشريحة الزجاجية مهمة لتركيز مصدر الضوء وتشكيل صورة توقف الحقل على مستوى الكائن. في هذه الحالة ، فإن شريحة زجاجية بسمك 0.9 ^ - 1.0 مم مناسبة.

مجهر مضان هو مصدر ضوء نقاط مع كفاءة مضيئة عالية ، والتي تنبعث من الضوء من طول موجي معين (مثل الأشعة فوق البنفسجية 3650 أو الضوء الأزرق البنفسجي 4200) مثل ضوء الإثارة من خلال نظام ألوان المرشح. بعد الإثارة ، تنبعث مواد الفلورسنت في العينة من مضان لألوان مختلفة ، ثم لاحظ من خلال تضخيم العدسة الموضوعية والعدسة. وبهذه الطريقة ، في ظل خلفية التباين القوية ، حتى التألق ضعيف للغاية ، من السهل التعرف عليه ، والحساسية عالية. يستخدم بشكل أساسي لدراسة بنية الخلية والوظيفة والتكوين الكيميائي لا يعمل مصدر الضوء لمجهر مضان كإضاءة مباشرة ، ولكن كمصدر للطاقة لتحفيز مادة الفلورسنت داخل العينة. السبب في أننا نستطيع مراقبة العينة ليس إضاءة مصدر الضوء ، ولكن ظاهرة مضان مقدمة من مادة الفلورسنت في العينة بعد امتصاص طاقة الضوء المتحمس. يمكن ملاحظة أن السمة الرئيسية للمجهر الفلوريس في أن مصدر الضوء يمكن أن يوفر كمية كبيرة من ضوء الإثارة في نطاق طول موجي معين ، بحيث يمكن لمواد الفلورسنت في العينة الحصول على الكثافة اللازمة لضوء الإثارة. في الوقت نفسه ، يجب أن يحتوي المجهر المضيف على نظام المرشح المقابل. مجهر مضان هو أداة خاصة للكشف عن المجهر مضان ، وهو نوع من المجهر الضوئي. بالإضافة إلى الهيكل الأساسي والتضخيم البصري للمجهر البصري ، فإنه يحتوي أيضًا على المتطلبات الوظيفية الفريدة التالية بناءً على خصائص التألق: (1) مصدر الضوء الذي يوفر طاقة كافية لإثارة مضان. (2) مع مجموعة من مرشحات الألوان للتكيف مع طيف الإثارة المطلوب من قبل مواد مختلفة ، يتم تحديد طيف الإثارة المناسب من مصدر الضوء ، بحيث يتزامن الطيف مع طيف الامتصاص للمادة ، من أجل الحصول على أقصى مضان. ( 3) ) من أجل الحصول على صورة ضعف مضان ، يجب أيضًا إنشاء مجموعة من مرشح اللون القطع ، مما يجعل مضان الملاحظة المطلوبة يذهب إلى النظام للتصوير ، وبقية الموجات الخفيفة ، بما في ذلك المنبعثة الضوء ، يتم حظره لتحسين بطانة الصورة. ( 4 ) يجب أن يتكيف النظام البصري المتضخم مع خصائص التألق ، وأخيراً الحصول على صورة مضان جيدة مع سطوع عالية ودقة عالية يمكن ملاحظتها وتصويرها. (5) سلامة الصك. يعد تطبيق مصباح الزئبق ضروريًا لمنع تسرب الضوء فوق البنفسجي وانفجار مصباح الزئبق ، لضمان سلامة الأجهزة الكهربائية.

بالنسبة للحشرات الصغيرة مثل لاعبي القفز ، والبراغيث والبلاطات ، لا ينبغي إدراج الإبر مباشرة ، ولكن يجب استخدام طرق خاصة. 1 . الاستيفاء المزدوج حجم الإبرة 00 رقيق وقصير ، مع طرف حاد ولا غطاء إبرة. يستخدم خصيصا لثقب الحشرات الصغيرة والشاقة. تم التقاط جسم الحشرات بملقط صغير ، وتم ثقب العينة رأسياً مع microneedle وفقًا لموضع الإبرة المنتظم ، وتم إدخاله على كتلة الفلين الثلاثة الصغيرة أو الورق الصلب. ثم تم إدخال إبر الحشرات أعلاه رقم 1 بالقرب من الحافة السفلية للورق الثلاثي ، ثم تم إصلاح موضع الحشرات مع مرحلة من ثلاث مراحل. كانت العينة والتسمية المدرجة على الجانب الأيسر من إبرة الحشرات. 2. استيفاء الدودة قم بقطع الورق المقوى إلى بطاقة ثلاثية متساوي الساقين مع طول الحافة السفلية 0.4 سم وارتفاع 1 سم. قم بتسميد طرف إبرة الحشرات في اللاتكس وأوجهها برفق على طرف البطاقة الثلاثي. ثم قم بلصق جسم الحشرات بطرف الإبرة ووضعه على اللاتكس ، وسحب الإبرة بسرعة لتجنب التقاط جسم الحشرات. النقطة الرئيسية في هذه العملية هي أنه لا ينبغي أن يكون هناك الكثير من اللاتكس على طرف الإبرة. إذا كانت العينة الملتصقة تحتاج إلى أن تكون مستقيمة ، فيمكن استخدام طرف الحشرات لتحريكه. أخيرًا ، يمكن إدراج إبرة الحشرات بالقرب من الحافة السفلية لفيلم المثلث ، ويمكن إصلاح موضع الحشرات مع مرحلة من ثلاث مراحل ، ويمكن إدراج الملصق في صندوق العينة للتخزين على المدى الطويل.

من خلال أبحاث الناس حول علم الأحياء ، من أجل مراقبة الهيكل التجريبي ، يجب تقطيع المزيد والمزيد من المقالات التجريبية للمراقبة التجريبية. لذلك ، ظهرت آلات القطع التجريبية للعقاقير البيولوجية المختلفة. ساعد ظهور آليات التقطيع الناس على معالجة عينات تجريبية مختلفة. من أجل تسهيل مراقبة الهيكل التجريبي ، لا يحتاج الناس فقط إلى المعالجة المسبقة لعينات الاختبار ، ولكن أيضًا لتقطيع السماكة بدقة. طريقة التقطيع هي استخدام أدوات القطع الحادة لخفض الأنسجة إلى شرائح رقيقة للغاية. يجب أن تخضع المواد لسلسلة من العلاجات الخاصة ، مثل التثبيت والجفاف والتضمين والتقطيع والصباغة ، وما إلى ذلك. العملية معقدة للغاية. في عملية الإنتاج ، يحتاج أيضًا إلى الخضوع لسلسلة من العلاجات الفيزيائية والكيميائية ، والتي يمكن اختيارها بشكل معقول وفقًا لمتطلبات الملكية لمختلف المواد. على الرغم من أن عملية التقسيم مرهقة والتكنولوجيا معقدة ، إلا أنها يمكن أن تحافظ على العلاقة الطبيعية بين الخلايا والحفاظ على المظهر الأصلي للخلايا لوقت أفضل وأطول ، لذلك لا تزال الطريقة الرئيسية لصنع المجهر الضوئي. عادة ما تستخدم Slicers الحالية التقطيع اليدوي. استقرار ودقة التقطيع منخفضة ، ولا يمكن أن يكون سمك التقطيع متسقًا. إنه جهاز شرائح بيولوجي يسهل تشغيله ومرونة في الاستخدام ومريحة لتحسين استقرار ودقة التقطيع. في الوقت الحاضر ، هناك شرائح الأنسجة البيولوجية شائعة الاستخدام ، شرائح البارافين ، شرائح المجمدة وما إلى ذلك. تشتهر شرطة الأنسجة البيولوجية بدقة واستقرارها العالية. يتم تغذيته بواسطة محرك خطوة ، وله وظائف تراجع العينة وعد الشريحة ، ويتم وضعها بدقة على محور X / Y من رأس العينة. مبدأ العمل للقطعة بسيط نسبيًا ، أي ، باستخدام سطح القطع الحاد للقطعة ، يتم قطع الكائنات والمواد إلى قطع وفقًا لنسبة أو عرض النقطة. حتى تكون مناسبة للإنتاج أو الأدوية أو الاستخدامات الأخرى. الغرض الرئيسي من الشريحة البيولوجية هو تقطيع المواد مثل المواد الطبية وأنسجة الخلايا والشمع ، وذلك لتسهيل العملية التالية.

1. تثبيت إدراج دبوس بشكل عام ، يتم جمع العينات الطازجة بعد قتل السم. إذا كانت العينات جافة وصعبة ، فيجب وضعها في المنقي لمدة 1-2 أيام قبل إدخال الإبرة لإصلاح الديدان ؛ قم بإخراج الحشرات بعناية من المنقي مع الملقط ووضعها على مرحلة الموقف بأكملها ، وتجنب اللمس بأيدي قدر الإمكان ؛ حدد إبرة الحشرات المقابلة وفقًا لحجم جسم الحشرات ، وأدخل إبرة الحشرات من اليمين قليلاً من خط الوسط من الجزء الخلفي من جسم الحشرات ، وقم بإخراجها من البطن ، مما يجعل الإبرة عمومًا في منتصف قدمان. 2. انشر أجنحة المرء وتصويب وضع واحد تحتاج الفراشات ، اليعسوب والحشرات الأخرى إلى نشر أجنحتها. عند نشر الأجنحة ، أدخل العينة أولاً مع الإبرة في لوحة الانتشار بعناية ، بحيث يقع جسم الحشرات في الأخدود ، والأجنحة ولوحة الانتشار في وضع أفقي. ثم تتكشف عن الأجنحة مع ملقط لجعل الحافة الخلفية للأجنحة الأمامية عموديًا على الجسم. بعد ضبط الأجنحة على الموضع المثالي ، اضغط على الأجنحة مع ورق الشريط في يد واحدة ، وأدخل الدبوس حول ورق الشريط في من ناحية أخرى ، ولكن ليس في الأجنحة ، بحيث تكون ورقة الشريط ولوحة تمديد الجناح يمكن الجمع بشكل وثيق لإصلاح الأجنحة. بعد نشر أجنحتك ، اضبط موضع الهوائيات والقدمين والبطن ، وستتم ذلك. 3. التجفيف والتخزين بعد أن تكمل العينة الإجراءات المذكورة أعلاه ، تم الانتهاء من ذلك تقريبًا. الباقي هو تجفيف العينة. بشكل عام ، يمكن تجفيفها في صندوق درجة حرارة ثابتة عند 50 درجة مئوية لمدة أسبوع تقريبًا. إذا لم يكن هناك صندوق تجفيف ، فيمكن أيضًا وضعه في مكان داخلي تهوية للتجفيف. بعد التجفيف ، يمكن تخزين العينة في صندوق العينة. يجب تخزين صندوق العينة في مكان جاف وتجفيف. تمثل كل عينة حياة ، والتي يجب أن تعتز بها واستخدامها. على سبيل المثال ، لاحظ بعناية شكله ، وحاول تصنيف وإجراء أبحاث علمية أخرى.

قسم البارافين هو الطريقة الأكثر استخدامًا في التقنيات النسيجية التقليدية. لا يتم استخدامه فقط لمراقبة التركيب المورفولوجي للخلايا والأنسجة الطبيعية ، ولكن أيضًا الطريقة الرئيسية التي تستخدمها علم الأمراض والطب الجنائي والتخصصات الأخرى لدراسة التغيرات المورفولوجية والأنسجة ، وقد استخدمت على نطاق واسع في العديد من التخصصات والحقول الأخرى. تتضمن طريقة تقسيم البارافين خطوات استخراج المواد ، والتثبيت ، والغسيل والجفاف ، والشفافية ، والانغماس في الشمع ، والتضمين ، والقسمة ، واللصق ، وزيادة الشمع ، والصباغة ، والجفاف ، والشفافية والختم. عادة ما تستخدم أقسام البارافين لتلطيخ أو IHC. السُمك أرق ، عمومًا 4um ، تكون العملية أكثر تعقيدًا ، وتعتمد جودة العينة على نوع وتكوين الأنسجة المختلفة ، والتي تعتمد أكثر على تجربة الشركة المصنعة. يجب تحسينها باستمرار في العملية التجريبية للحصول على أفضل الظروف التجريبية.

يمكن أن يصل تكبير المجهر البيولوجي العادي إلى 1000-1600 مرة. بشكل عام ، تعد الكائنات الحية الدقيقة مثل الفطريات والخمائر كبيرة نسبيًا ، ويمكن الحصول على نتائج جيدة مع عدسة موضوعية منخفضة الطاقة والعدسة الموضوعية عالية الطاقة. ومع ذلك ، لرؤية مورفولوجيا البكتيريا الملطخة والبنية المورفولوجية للخلايا حقيقية النواة ، من الأفضل استخدام عدسة زيت. عدسة الزيت هي نوع من العدسة الهدف من المجهر. الاسم الكامل هو عدسة موضوعية ملطخة بالزيت. تشمل متوسط ​​العدسة الهدف من المجهر الهواء والماء والزيت. يتم استخدام الأخيرين للعدسة الموضوعية عالية الدقة. إتقان الاستخدام الصحيح لمرآة الزيت 1. عند استخدام عدسة الزيت ، قم أولاً بإسقاط الإسفلت على الشريحة الزجاجية لزيادة الضوء الذي يدخل عدسة الزيت ، ويعزز سطوع المجال البصري ، وجعل صورة الكائن أكثر وضوحًا. 2. ضع المجهر في وضع مستقيم على الطاولة ، ولا تنحني ذراع المرآة لإمالة المرحلة ، وذلك لتجنب انسكاب الإسفلت ، مما يؤثر على الملاحظة وتلويث الجدول. 3. الهدف عند استخدام الضوء الطبيعي كمصدر للضوء ، يجب استخدام عاكس الطائرة ؛ إذا تم استخدام الضوء الاصطناعي ، يجب استخدام المرآة المقعرة. أولاً ، افتح الفتحة وقم بتدوير العاكس لتركيز الضوء على جامع الضوء. يمكنك تحريك جامع الضوء لأعلى ولأسفل وتوسيع نطاق الفتحة حسب الحاجة للحصول على أفضل سطوع. 4. تعديل التركيز: ① ضع العينة على المسرح ، ثم قم بإصلاحها باستخدام عينة من عينة ، وحرك الجزء المطلوب فحصه تحت العدسة الموضوعية. اكتشف أولاً موضع العينة مع عدسة منخفضة الطاقة ، ثم قم برفع برميل العدسة ، وإسقاط قطرة من زيت العدسة على العينة المراد اختبارها ، ثم تغيير عدسة الزيت للمراقبة. ② اقلب الضابط الخشن لرفع المسرح ببطء (أو خفض برميل العدسة تدريجياً) حتى يتم غمر عدسة الزيت في الزيت. في هذا الوقت ، يجب ملاحظة العيون من الجانب لتجنب سحق العينة وإتلاف العدسة. ③ ثم انقل كلتا العينين إلى العدسة ، ومراقبة من العدسة ، وقم بتدوير الضابط الخشن ببطء (خفض المسرح أو رفع برميل العدسة) في الاتجاه المعاكس. عندما تكون هناك صورة كائن غير واضحة ، قم بالتغيير إلى الضابط الدقيق ، وقم بالتدوير حتى يتم واضح صورة الكائن. ④ بعد الملاحظة ، يجب رفع برميل العدسة أولاً ، ويجب أن تكون عدسة الزيت ملتوية على جانب واحد قبل إنزال العينة. بعد استخدام عدسة الزيت ، يتم القضاء على الزيت على العدسة على الفور مع ورقة مسح العدسة. إذا كان زيت العدسة جافًا على العدسة ، فيمكن مسح العدسة بقليل من الزيلين مغموس في ورقة مسح العدسة ، ثم يمكن مسح الزيلين المتبقي مع ورقة العدسة الجافة لمنع الزيلين من اختراق وذوبان اللثة تستخدم لإصلاح العدسة ، مما تسبب في تحول العدسة أو تسقط.

يمكن الاحتفاظ بعينات الشرائح الدائمة واستخدامها بشكل دائم. طريقة التحميل المتكاملة: إنها طريقة لإغلاق الكائن الحي الصغير أو جزء من العضو لصنع عينة شريحة. تنطبق هذه الطريقة بشكل عام على الكائنات الحية أو الأعضاء ذات الجسم الصغير أو جسم رفيع ، مثل الطحالب أحادية الخلية ، والطحالب الخيطية ، والفطريات ، والبرايوفيتات الناعمة ، والبروتوبلاست ، و proporangia من السرخس ، والبشرة من النباتات العليا ، والزهور ، والحبوب ، والبروتوزوان ، والأجنحة ، والأجنحة ، هوائيات ، أقدام من الحشرات ، وأجنة الفرخ يجب إيلاء الانتباه إلى: (1) عند الضغط على الشريحة ، يجب أن تبقى مسطحة أو وضعها على المنصة. عند تقطيع الماء ، يجب أن تكون كمية الماء مناسبة ، بحيث يتم تغطيتها فقط بواسطة زجاج الغطاء. (2) يجب أن تتكشف المواد على نفس الطائرة دون تداخل مع إبرة تشريح أو ملقط. (3) عند وضع زجاج الغطاء ، قم بتغطيته ببطء على إسقاط الماء من جانب واحد لمنع الفقاعات. (4) عند الصباغة ، ضع قطرة من سائل تلطيخ على جانب واحد من زجاج الغطاء ، وتمتصه من الجانب الآخر مع ورق ماصة لجعل العينة أسفل زجاج الغلاف ملون بشكل موحد. بعد التلوين ، استخدم نفس الطريقة ، وإسقاط قطرة من الماء ، وتمتص محلول تلطيخ ، ومراقبته تحت المجهر.

1. مكونات مختلفة يحتوي المجهر الإلكتروني على ثلاثة أجزاء ، وهي برميل العدسة وجهاز الفراغ وخزانة الطاقة. يتكون المجهر البصري بشكل أساسي من أربعة أجزاء ، وهي العدسة الموضوعية ، العدسة ، العاكس والمكثف. 2. مبدأ التصوير مختلف. يستخدم المجهر الإلكترون شعاع إلكترون لاختراق عينة ، ثم يضخم الصورة بواسطة عدسة. يستخدم المجهر الضوئي أساسًا مبدأ التصوير المكبرة للعدسة المحدبة لتكبير العينة. 3. مصدر الإضاءة مختلف. مصدر الإضاءة الذي يستخدمه المجهر الإلكتروني هو تدفق الإلكترون المنبعث من مسدس الإلكترون ؛ مصدر الإضاءة للمجهر البصري هو الضوء المرئي (ضوء الشمس أو الضوء). نظرًا لأن الطول الموجي لتدفق الإلكترون أقصر بكثير من الطول الموجي لموجة الضوء ، فإن تكبير ودقة المجهر الإلكتروني أعلى بكثير من مجهر الضوء. 4. العدسات مختلفة. العدسة الموضوعية للتكبير في المجهر الإلكتروني هي العدسة الكهرومغناطيسية (لفائف كهرومغناطيسية على شكل حلقة يمكنها توليد مجال مغناطيسي في الجزء المركزي) ؛ العدسة الموضوعية للمجهر البصري هي عدسة بصرية مصنوعة من الزجاج. هناك ثلاث مجموعات من العدسات الكهرومغناطيسية في المجهر الإلكتروني ، والتي تعادل عدسة المكثف والعدسة الموضوعية وعدسة العدسة في العدسة البصرية. 5. استخدامات مختلفة نظرًا لدقة عالية ، يمكن استخدام المجهر الإلكتروني لمراقبة بنية المواد الدقيقة التي لا يمكن تمييزها بواسطة المجهر العادي ، ويمكن أيضًا استخدامها للمساعدة في تحليل تكوين المواد. يستخدم المجهر البصري بشكل أساسي لمراقبة المواد المجهرية في علم الأحياء والطب ، وكأداة تجريبية للطلاب في التدريس.